Sistema de Información de Plagas - Colombia: Browsing DSpace

.ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2023. Reporte de resultados para Citrus sinensis (L.) Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario R4123M0000349. Muestra nro. M4123M002231. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

.ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2023. Reporte de resultados para Citrus sinensis Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario R3823M0000040. Muestra nro. M4022M002714. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

.ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2023. Reporte de resultados para Citrus x limón. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario R4023M0000071. Muestra nro. M4023M000190. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

Abadía, J., Arcila, Á. & P. Chacón. 2013. Incidencia y distribución de termitas (Isoptera) en cultivos de cítricos de la costa Caribe de Colombia. Revista Colombiana de Entomología 39(1): 1-8. 6

Abang, M., Hoffmann, P., Winter, S., Green, K. & G. Wolf. 2004. Vegetative Compatibility Among Isolates of Colletotrichum gloeosporioides from Yam (Dioscorea spp.) in Nigeria. Journal of Phytopathology 152(1): 21-27. 1

Abarca, G. & M. Quesada. 1997. Especies del complejo de jobotos (Phyllophaga spp., Anomala spp. y Cyclocephala spp.) asociadas a cultivos, en el Valle Central y Pacífico seco de Costa Rica. Agronomía Mesoamericana 8(2): 44-53. 1

Abrego, L. & A. Tarjan. 1972. Reconocimiento de nematodos en cultivos de importancia económica en el Salvador. Nematropica 2(2): 27-29. 2

Abrego, L. & A. Tarjan. 1972. Reconocimiento de nematodos en cultivos de importancia económica en el Salvador. Nematropica 2(2):27-29. 2

Abreu, E., Gutieérre, A., Quintero, M., Molina, L., Anido, J., Ablan, E., Cartay, R. C. Mercado. 2007. El Cultivo del plátano en Venezuela. Desde el campo hasta la mesa. Fundación empresas Polar. Centro de Investigaciones Agroalimenticias (CIAAL). Universidad de Los Andes. 154 pp. 3

Acosta, J. Ortiz, C., García, J., Zaldívar, M., Rodríguez, C., Bautista & C. Castillo. 2012. Identificación del agente causal e importancia de la gomosis en la zona citrícola de Huimanguiillo, Universidad y Ciencia 28(3): 245-258. 1

Acosta-Suárez, M., Alvarado-Capó, Y., Cruz-Martín, M., Leiva-Mora, M., Sánchez-García, C., Roque, B., Quiala, E., Chávez, M., Jiménez-Terry, F., la O, M., Barbón, R., Collado, R., Rodríguez, M., De Feria, M., Borroto, I., & M. Pérez. 2009. Micobiota de plantas donadoras y hongos filamentosos contaminantes del establecimiento in vitro de cinco especies forestales. Biotecnología Vegetal. 9(2): 99-103. 1

Acuña, A., Lozano, M., de García, M. & G. Díaz. 2005. Prevalence of Fusarium species of the Liseola section on selected Colombian animal feedstuffs and their ability to produce fumonisins. Mycopathologia 160: 63-66. 3

Adler, N., Chacón, G., Fier, W. & G. Forbes. 2002. The Andean fruit crop, pear melon (Solanum muricatum) is a common host for A1 and A2 strains of Phytophthora infestans in Ecuador. Plant Pathology 51: 802. 1

Aegerter, B., Nuñez, J. & R. Davis. 2002. Detection and management of downy mildew in rose rootstock. Plant Disease 86(12): 1363 -1368. 1

Afanador, L., González, A., Gañán, L., Mejía, J. F., Cardona, N. & E. Alvarez. 2014. Characterization of the Colletotrichum species causing anthracnose in Andean blackberry in Colombia. Plant Disease 98:1503-1513. 4

Afanador, L., Maya, S., Arbeláez, L., Trillos, O. & H. Echavarría. 2008. Moniliasis del cacao en Antioquia: Diversidad morfológica en poblaciones del agente causante Moniliophthora roreri (Cif.) Evans et al. Fitopatología Colombiana 32(2): 1-9. 1

Afshan, N., Khalid, A. & A. Niazi. 2012. New records of Puccinia species on Poaceae from Fairy Meadows, Pakistan. Mycotaxon 120: 407-413. 1

Agboola, J. & T. Omosanyin. 2017. Occurrence of toxigenic moulds isolated in maize (Zea mays) from Okitipupa metropolis, Ondo State, Nigeria. International Journal of Food Safety, Nutrition, Public Health and Technology 9(4): 28-37. 1

AGDIA. 2023. reporte de Resultado Análisis y Diagnóstico Fitosanitario Activity #2023061303 para CarMV. Muestra #1. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp 1

Agredo, C., Chaparro, E. & J. Zuluaga. 1988. Observaciones sobre características, distribución y daños de sinfilidos (Symphyla) y otros organismos del suelo en cultivo de piña, Ananas comosus, del Valle. Acta agronómica 38(2):65-73. 1

Agredo, M., Bravo, N. & C. Torres. 2000. Prediagnóstico de microorganismos patógenos en frutos de maracuyá Passiflora edulis var. flavicarpa. ASCOLFI Informa 26(1):4-5. 1

AGROSAVIA (Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria). 2018. Solicitud para modificar el estatus fitosanitario: nuevo reporte para Phakopsora pachyrhizi. 27pp. 1

Agudelo, J., Ruíz, M., Salazar, H., Toro, H. & R. Mejía. 1995. Reconocimiento de nematodos fitopárasitos en zanahoria (Daucus carota L.) y apio (Apium graveolans L.) en el municipio de Villamaría (Depto. de Caldas). Resúmenes XVI Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 49 pp. 12

Agudelo, P. & Ch. Volcy. 1997. Población de nematodos fitoparásitos en dos municipios cañeros de Antioquia. Fitopatología Colombiana 21(2): 89-96. 4

Aguilar, G. & L. García. 2008. Diagnóstico fitosanitario de la producción de fresa en Villa Guerrero, México. Tesis Ingeniero de Alimentos. Unidad Profesional Interdisciplinaria de Biotecnología. Instituto Politécnico Nacional. México D.F. 32pp. 1

Aguirre, M. & J. Castaño. 2005. Epidemiologia de Mycosphaerella fijiensis Morelet y M. musicola Leach, en siete genotipos de musáceas. Fitopatología Colombiana 29(1): 7-11. 2

Ahmad, K., Sijam, K., Hashim, H., Kadir, J. & S. Rastan, 2009. Characterization of Candidatus liberibacter asiaticus isolated from Citrus grandis and Citrus reticulata based on 16S rDNA and outer membrane protein (OMP) genes. International Journal Agriculture & Biology 11(4): 401-407. 1

Ahmad, K., Sijam, K., Hashim, H., Kadir, J. & S. Rastan, 2009. Characterization of Candidatus liberibacter asiaticus isolated from Citrus grandis and Citrus reticulata based on 16S rDNA and outer membrane protein (OMP) genes. International Journal Agriculture & Biology 11(4): 401-407. 7

Ahmed, N & S. Adb-Rabou. 2010. Host plants, geographical distribution, natural enemies and biological studies of the citrus mealybug, Planococcus citri (Risso) (Hemiptera: Pseudococcidae). Egyptian journal of biological sciences 3(1): 39-47. 1

Al-Saaedy, H. & Z. Stephan. 1986. Root-Knot Nematodes on eggplant in Iraq. Nematología Mediterranea 14:283-284. 1

Alama, I., Maldonado, E. & E. Rodríguez. 2006. Lasiodiplodia theobromae afectando el cultivo de palto (Persea americana) en las condiciones de Piura, Perú. Universalia 11 (2): 4-13. 1

Alama, I., Maldonado, E. & E. Rodríguez. 2006. Lasiodiplodia theobromae afectando el cultivo de palto (Persea americana) en las condiciones de Piura, Perú. Universalia 11(2): 4-13. 1

Alandia, S., Otazú, V. & B. Salas. 1979. Enfermedades. En: Tapia, M., Gandarillas, H., Alandia, S., Cardozo, A., Mujica, A., Ortiz, R., Otazú, V., Rea, J., Salas, B. & E. Zanabria. La quinua y la kañiwa. Cultivos Andinos. Serie Libros y materiales educativos No 40. Centro Internacional de Investigaciones para el Desarrollo (CIID), Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA). Editorial IICA. Bogotá, Colombia, 137-148 pp. 1

Alcantara, C. 2013. “Ciclo biológico de Carmenta foraseminis Eichlin, en Theobroma cacao – en la zona de Satipo”. Tesis Ingeniero en Ciencias Agrarias. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional del Centro del Perú. Satipo. Perú. 41pp. 1

Aldana, H. 1994. Eficiencia de la Deltrametrina en polvo (K-Obiol) en el control de los gorgojos del maíz Sitophilus oryzae (L.) y Pagiocerus frontalis (F.) en la zona maicera de Caqueza (Cundinamarca). Agronomía Colombiana 11(1):20-33. 2

Alemán, R. & M. Espinoza. 1997. Efecto de labranza y control químico de malezas sobre la dinámica de malezas y el crecimiento y rendimiento del frijol común (Phaseolus vulgaris L.). Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Agronomía. Universidad Nacional Agraria. Managua, Nicaragua. 49pp. 2

Alexander, B. & A. Stewart. 2001. Glasshouse screening for biological control agents of Phytophthora cactorum on apple (Malus domestica). New Zealand journal of crop and horticultural science 29(3):159-169. 1

Aliaga, F., Hopp, E., Alvarez, E. & L. Becerra. 2018. First report of a 'Candidatus Phytoplasma asteris' isolate associated with banana elephantiasis disease in Colombia. New Disease Reports 37: 12. 1

Alippi, A., Bó, E., Ronco, L., Casanova, P. & O. Aguilar. 1997. Tomato as a new host of Erwinia carotovora subsp. carotovora in Argentina. Plant Disease 81(2): 230-230. 1

Allauca, S. 2004. Evaluación de 50 accesiones de Solanum phureja con resistencia a Phytophthora infestans y Rhizoctonia solani. Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrícolas. Universidad Central de Ecuador. Quito, Ecuador. 108pp. 1

Allccahuamán, R. & W, Ochoa. 2019. Respuesta nematológica y agronómica de diez clones de Solanum tuberosum “papa” a Globodera pallida Stone. Journal of the Selva Andina Biosphere 7 (2): 11 3

Almario, O., Sabogal, A. & P. Segura. 1981. Poblaciones de insectos plagas de la panoja del sorgo de grano (Sorghum bicolor (L) moench ). Acta Agronómica 31(1-4):125-131. 6

Almeida, L. & R. Coêlho. 2007. Caracterização da agressividade de isolados de Colletotrichum de maracujá amarelo com marcadores bioquímico, fisiológico e molecular. Fitopatología Brasileira 32(4): 318-328. 1

Alonzo, F. & M. Palma. 1985. Diagnóstico parasitológico preliminar de los principales cultivos de El Salvador. Centro de Tecnología Agrícola (CENTA). Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE). Proyecto MIP en El Salvador. 22pp. 2

Aluja, M. Guillén, J. De la Rosa, J. Cabrera, M. Celedonio, H. Liedo, P. & J. Hendrichs. 2014. Natural Host Plant Survey of the Economically Important Fruit Flies (Diptera: Tephritidae) of Chiapas, Mexico. The Florida Entomologist. 70(3). 329-338. 1

Alvarado, A. & M. Díaz. 2007. Guía práctica de plagas y enfermedades en plátano y guineo. Servicio de Extensión Agrícola. Colegio de Ciencias Agrícolas. Recinto Universitario de Mayagüez. Puerto Rico. 41pp. 1

Alvarez, E. 1988. Método simple de selección para la producción de semilla de papa. Revista latinoamericana de la papa 1:18-24. 1

Alvarez, E., Mejía, J., Contaldo, N., Paltrinieri, S., Duduk, B. & A. Bertaccini. 2014. 'Candidatus Phytoplasma asteris' strains associated with oil palm lethal wilt in Colombia. Plant Disease 98(3): 311-318. 1

Alvaro, L. 1998. Manual para la identificación y manejo de las principales malezas en caña de azúcar en Guatemala. Centro Guatemalteco de Investigación y Capacitación de la Caña de Azúcar (CENGICAÑA). Guatemala. 131 pp. 1

Alves de Sá, V. & M. Gino. 2015. Spatial Distribution of Nymphs of Triozoida limbata Enderlein, 1918 (Hemiptera: Triozidae) in Guava Orchards. Journal of Agricultural Science 7(2): 41-54 1

Amador, F. & N. Tijerino. 2005. Insectos y enfermedades asociados al cultivo de mora (Rubus glaucus, Benth) en la Sabana de Madriz. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Agronomía. Universidad Nacional Agraria. Managua. Nicaragua. 75 pp. 1

Amani, M., Tanha, Z., Achak, M. & S. Habibi. 2008. Identification of plant parasite Nematodes of banana in Systan and Blouchestan. http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=IR2010000087 (Último acceso: Junio, 2017). 1

Ames, T. 1997. Enfermedades fungosas y bacterianas de raíces y tubérculos andinos. Centro internacional de la Papa (CIP). Lima, Perú. 151-154pp. 1

Amézquita, Y., Muñoz, A., Cáceres, M. & J. Bernal. 2000. Reconocimiento y clasificación de arvenses hospederas del nematodo Meloidogyne sp. en el cultivo de curuba Passiflora mollisima, en tres municipios del departamento de Boyacá. En: Memorias XXI Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 16 pp. 12

Amoah, B., Rezanoor, H., Nicholson, P. & M. Macdonald. 1995. Variation in the fusarium section Liseola: pathogenicity and genetic studies of isolates of Fusarium moniliforme Sheldon from different hosts in Ghana. Plant Pathology 44:563-572. 1

Andrade, G., Rubiano, M. & F. Varón. 1979. Nematodos asociados con el cultivo de la caña de azucar (Saccharum officinarum L.) en el Valle del Cauca. Fitopatología Colombiana 8(2): 64-72. 6

Andrade, M., Briceño, J., Muños, P. & J. Jiménez. 1989. Búsqueda y reconocimiento de los enemigos naturales y hospedantes alternos de las principales plagas en flores bajo invernadero en la Sabana de Bogotá. Acta Biológica Colombiana 1(5): 45-57. 1

Andrade, M., Briceño, J., Muños, P. & J. Jiménez. 1989. Búsqueda y reconocimiento de los enemigos naturales y hospedantes alternos de las principales plagas.e flores bajo invernadero en la Sabana de Bogotá. Acta Biológica Colombiana 1(5): 45-57. 1

Andrades, I., Yender, F., Labarca, J., Ulacio, D., Paredes, C. & Y. Marín. 2009. Evaluación de la antracnosis (Colletotrichum sp.) en guanábana (Annona muricata L.) tipo Gigante en el sector Moralito del estado Zulia, Venezuela. Revista Científica UDO Agrícola 9(1): 148-157. 1

Angel, J. & J. Victoria. 1993. Eficiencia del áfido Hysteroneura setariae Thos. en la transmisión del virus del mosaico de la caña de azúcar. En: Resúmenes XIV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Santa Marta, Colombia. 89 pp. 1

Angel, J. & J. Victoria. 1993. Eficiencia del áfido Hysteroneura setariae Thos. en la transmisión del virus del mosaico de la caña de azúcar. Resúmenes XIV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Santa Marta, Colombia. 89 pp. 1

Angel, J., Pineda, B., Nolt, B. & A. Velasco. 1989. Moscas blancas (Homopthera: Aleyroidae) asociadas a transmisión de virus en yuca. Fitopatología Colombiana 13(2): 65-71. 1

Angel, J., Pineda, B., Nolt, B. & A. Velasco. 1987. Estudios sobre la transmisión por "Moscas blancas" (Homoptera: Aleyrodidae) de virus asociados con el "Cuero de sapo" en yuca (Manihot esculenta Crantz). Acta Agronómica 37(4):27-39. 3

Antoniou, M.1981. A nematological survey of vineyards in Cyprus. Nematologia Mediterranea 9: 133-137. 3

Anwar, S. & M. McKenry. 2010. Incidence and reproduction of Meloidogyne incognita on vegetable crop genotypes. Pakistan Journal of Zoology 42(2):135-141. 3

Anzalone, A., Ramírez, H., Lugo, J., Cirujeda, A., Zaragoza, C. & J. Aibar. 2011. Evaluación de cubiertas de suelo para control de malezas en la producción integrada de tomate. Revista de la Facultad de Agronomía LUZ 28: 71-90. 2

Añez, D., Cuello, I., Villabobos, D. & S. Tapias. 2003. Aislamiento e identificación de hongos en los granos almacenados de maíz, fríjol y lenteja en la ciudad de Valledupar. ASCOLFI Informa 29(1):4-6. 3

Apolinar, M. 1946. Miscelánea Entomológica: Algo sobre Esfíngidos colombianos. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 7(25-26):53-63. 1

Apolinar, M. 1946. Miscelánea Entomológica: Insectos nocivos en los pastos de la Sabana de Bogotá. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 6(24):552-554. 1

Arango, R., Lemos, G., Morales, C., Muñoz, J. & C. González. 1986. Evaluación del daño de Diatraea spp. (Lep. pyralidae) y su efecto en el rendimiento de genotipos de maíz (Zea mays L.) y sorgo (Sorghum bicolor) en el Valle del Cauca. Acta Agronómica 36(2):135-157. 2

Araujo, W. 1999. Evaluation of the efficiency of fungicides for treatment of cotton seeds (Gossypium hirsutum L.). En : Anais II Congresso Brasileiro de Algodão: O algodão no século XX, perspectivas para o século XXI. Sao Pablo, Brasil. 5-10pp. 1

Araya, C., Peña, E., Salazar, E., Román, L., Medina, C., Mora, R., Aljaro, A. & I. Rosales. 2011. Symptom severity and viral protein or RNA accumulation in lettuce affected by big-vein disease. Chilean journal of agricultural research 71(1): 63-72. 2

Araya, J., Estay, P. & M. Araya. 2006. Short communication. Toxicity of abamectin, acetamiprid, imidacloprid, mineral oil and an industrial detergent with respect to Encarsia formosa (Gahan) parasitizing Trialeurodes vaporariorum Westwood nymphs. Spanish Journal of Agricultural Research 4(1): 86-90. 3

Araya, M. 1995. Efecto depresivo de ataques de Radopholus similis en Banano (Musa AAA). Corbana 20(43): 3-6 1

Aránzazu, F. 1997. Control de la llaga estrellada en Cacao causada por Rosellinia pepo Pat. Fitopatología Colombiana 21(1): 5-9. 1

Arbeláez, E. 1957. La llaga macana del tronco del cacao. Acta Agronómica 7(1):71-103. 1

Arbeláez, G., Guzmán, S., León, J., González, M., Molina, J., Parra, J., Angulo, J. & J. Álvarez. 1993. Control integrado del marchitamiento vascular del clavel ocasionado por Fusarium oxysporum f.sp. dianthi. Agronomía Colombiana 10(1):68-89. 2

Arboleda, M., Restrepo, F. & H. Valencia. 2002. Aislamiento y primer reporte del tizon bacteriano en Stocks, Mathiola incana causado por Xanthomonas campestris pv. Incanae en la Sabana de Bogotá. En: Memorias XXIII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 76pp. 1

Arciniegas, N & E. Flórez. 2002. Determinación de agentes causantes de pudrición de corona y pseudotallos en Musa acuminata don Bocadillo (Banano bocadillo). En: Memorias XXIII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 79-80pp. 3

Arellano, G., Vergara, C. & S. Bello. 2015. Plagas entomológicas y otros artrópodos en el cultivo de la piña (Ananas comosus var. comosus (L.) Merr., Coppens & Leal) en Chanchamayo y Satipo, departamento de Junín, Perú. Ecología Aplicada 14(2):175-189. 5

Arenas, A., Álvarez, E., Afanador, L., Mejía, J. & A. González. 2007. Especies de Colletotrichum asociadas con la antracnosis de la mora de castilla (Rubus glaucus Benth) en el Valle del Cauca. Fitopatología Colombiana 31(1): 7-14. 3

Arevalo, C. 2018. Hongos asociados al falso mal de panamá en el cultivo de banano orgánico en el Valle del Chira Sullana, Piura. Tesis Ingeniero Agrónomo. Escuela profesional de Agronomía, Facultad de Agronomía. Universidad Nacional de Piura, Perú. 55pp. 2

Arevalo, E. Quintero, O. & G. Correa. 2003. Reconocimiento de trips (Insecta: Thysanoptera) en floricultivos de tres corregimientos del municipio de Medellín, Antioquia (Colombia). Revista Colombiana de Entomología 29 (2): 169-175. 1

Arevalo, E. Quintero, O. Correa, G. 2003. Reconocimiento de trips (Insecta: Thysanoptera) en floricultivos de tres corregimientos del municipio de Medellín, Antioquia (Colombia). Revista Colombiana de Entomología 29 (2): 169-175. 3

Arévalo, E. 1994. Biología y hábitos del gusano de la piña Melanoma viatrix Hendel. En: Salazar, R. & A. García (eds.). Control de enfermedades y plagas de la piña. Separata de Sistemas de cultivo de la piña. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). Santafé de Bogotá. 41-43pp. 1

Argel, L., Marín, M., Cotes, J., Jaramillo, S. & E. Guzmán. 2007. Evaluación molecular y fenotípica de la sensibilidad al fungicida fenamidone en aislamientos de Peronospora sparsa. Agronomía Colombiana 25(1):149-159. 1

Arguedas M., Chaverri P., & J. M. Verjans, 2004. Problemas fitosanitarios de la teca en Costa Rica. Recursos Naturales y Ambiente Número 41: 130-135. 1

Arguedas, M. & M. Rodríguez. 2016. Insectos barrenadores del xilema en especies forestales comerciales en Costa Rica. Revista Mexicana de Ciencias Forestales 7(35):79-89. 1

Arguedas, M. 2004. La roya de la teca Olivea tectonae (Rac.): consideraciones sobre su presencia en Panamá y Costa Rica. Kurú: Revista Forestal (Costa Rica) 1(1): 1-6. 3

Arguedas, M. 2007. Plagas y enfermedades forestales en Costa Rica. Kurú: Revista Forestal 4(11-12): 1-69. 2

Arguedas, M. 2007. Plagas y enfermedades forestales en Costa Rica. Revista Forestal Mesoamericana Kurú 4(11-12): 1-69 1

Arguedas, M. 2007. Plagas y enfermedades forestales en Costa Rica. Revista Forestal Mesoamericana Kurú 4(11-12): 1-69. 7

Arguedas, M., Chaverri, P., & J. M. Verjans, 2004. Problemas fitosanitarios de la teca en Costa Rica. Recursos Naturales y Ambiente 41(1): 130-135. 1

Arguedas, M., Chaverri, P., & J. M. Verjans, 2004. Problemas fitosanitarios de la teca en Costa Rica. Recursos Naturales y Ambiente Número 41: 130-135. 2

Argumero, B., Ortíz, A., Santaella, M. & C. Orozco. 1993. Resultados preliminares del ensayo de control biológico con microorganismos antagónicos de Phoma sp. en Pinus sp. y Eucalyptus sp.. Resúmenes XIV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Santa Marta, Colombia. 97 pp. 4

Ariel, C., Tsubota, M. & J. Leguizamón. 2000. Reconocimiento del virus del mosaico del cymbidium (CyMV - Potexvirus) y del virus de la mancha anular odontoglossum (ORSV- Tobamovirus) en Cattleya spp. Lindl. (Orchidaceae). Fitopatología Colombiana 23(2): 83-94 1

Arnal, E., Russell, L., Debrot, E., Ramos, F., Cermeli, M., Marcano, R. & A. Montagne. 1993. Lista de moscas blancas (Homoptera: Aleyrodidae) y sus plantas hospederas en Venezuela. Florida Entomologist 76(2): 365- 381. 2

Arriola, V., Muñoz, Z., Pérez, R., Pérez, M., Gijón, A., Ortiz, E. & J. Hernández. 2018. Entomofauna asociada a plantaciones comerciales de hule (Hevea brasiliensis (Willd. ex A. Juss.) Müll. Arg., 1865) en México. Entomología mexicana 5: 468−473. 1

Arroyo, C., Mexzón, R. & J. Mora. 2004. Insectos fitófagos en pejibaye (Bactris gasipaes K.) para palmito. Agronomía Mesoamericana 15(2):201-208. 2

Arteaga, M., Sañudo, B. & W. Vallejo. 2000. Presencia de Phytopthora en cultivos de tomate de árbol (Cyphomandra betacea) y Lulo (Solanum quitoense) en Nariño y Putumayo (1). Revista de Ciencias Agrícolas 17(1): 250-257. 1

Arthur, J. 1918. Uredinales of Guatemala Based on Collections by E.W.D. Holway. IV. Puccinia on Carduaceae, Form-Genera, and Index. American Journal of Botany 5(10): 522-550. 1

Arthur, J. 1922. Uredinales collected by Fred J. Seaver in Trinidad. Mycologia 14(1): 12-24. 1

Arturo, M., González, C., Peña, E. & J. Díaz. 2009. Mircroorganismos patógenos de Stevia rebaudiana Bertoni. Bioagro 21(3): 173-178. 1

Ashfaq, M., Shaukat, M., Akhter, M., Haider, M., Mubashar, U. & S. Hussain. 2015. Comparison of fungal diversity of local and exotic rice (Oriza sativa L.) germplasm for their seed health. Journal of Animal and Plant Sciences 25(5): 1349-1357. 1

Atik, O., Ahmed, S., Abang, M., Imtiaz, M., Hamwieh, A., Baum, M., El-Ahmed, A., Murad, S. & M. Yabrak. 2013. Pathogenic and genetic diversity of Didymella rabiei affecting chickpea in Syria. Crop Protection 46: 70-79. 1

Atlahua, I., Yáñez, M., Alatorre, R. & F. Hernández. 2015. Muermo rojo, Colletotrichum falcatum asociado a la mosca pinta en caña en Veracruz. XXXVII Convención Asociación de Técnicos Azucareros de México (ATAM) 2015. Boca del Río, Veracruz. 1

Australian government, 2003. Tahitian Limes from New Caledonia. Draft Import Risk Analysis Report.138p. 1

Avelino, J., Cabut, S., Barboza, B., Barquero, M., Alfaro, R., Esquivel, C., Durand, J. & C. Cilas. 2007. Topography and Crop Management Are Key Factors for the Development of American Leaf Spot Epidemics on Coffee in Costa Rica. Phytopathology 97(12): 1532-1542. 2

Avendaño, C. & J. Merchan. 1990. Evaluación del fungicida Iprodione para el control de la Cenicilla Botrytis cinerea Pers. Ex. Fr. En el cultivo de la fresa Fragaria vesca L. en Tuta (Boyacá). Tesis de Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Pedagógica y Tecnología de Colombia. Tunja. Colombia. 98 pp. 1

Aveskamp, M., de Gruyter, J., Woudenberg , J., Verkley, G. & P. Crous. 2010. Highlights of the Didymellaceae: A polyphasic approach to characterise Phoma and related pleosporalean genera. The Netherlands. Studies in Mycology 65: 1– 60. 1

Avila, A. 1996. Aislamiento y selección de organismos antagónicos a Sclerotinia sclerotiorum en lulo (Solanum quitoense Lam) en el municipio de Garagoa (Boyacá). En: Memorias XVII Congreso Nacional de Fitopatología. Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Paipa, Boyaca. 57pp. 1

Avila, A., Salazar, L., Ortega, M. & J. Daniels. 1984. A New strain of andean potato mottle virus from Brasil. Plant Disease 68(11): 997-998. 1

Avila, L., Orozco, C. & R. Navarro. 1993. Control con microorganismos antagónicos de Botrytis cinerea Pers. causante del moho gris en Eucalypthus globulus labill. Resúmenes XIV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Santa Marta, Colombia. 98 pp. 1

Awodoyin, R., Ogbeide, F. & O. Oluwole. 2007. Effects of three mulch types on the growth and yield of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) and weed suppression in Ibadan, rainforest-savanna transition zone of Nigeria. Tropical Agricultural Research & Extension 10: 53-60. 5

Ayo, J. & J. Hughes. 2014. Identification of Cucumber mosaic virus (CMV) Isolates Infecting Musa spp. and Vegetable Crops in Southern Nigeria. International Journal of Virology 10(3): 204-210. 1

Ayodele, S. & E. Ilondu. 2008. Fungi associated with base rot disease of aloe vera (Aloe barbadensis). African Journal of Biotechnology 7(24): 4471-4474. 1

Álvarez, A. & O. Martínez. 1990. Plan de muestreo secuencial para larvas del gusano cogollero del maíz (Lepidoptera: Noctuidae), en maíz. Agronomía Colombiana 7(1-2):26-32. 1

Álvarez, E., Gañan, L., Rojas, A., Mejía, J., Llano, G. & A. González. 2014. Diversity and pathogenicity of Colletotrichum species isolated from soursop in Colombia. European Journal of Plant Pathology 139: 325-338. 1

Álvarez, E., Loke, J. & R. Trujillo. 2007. Avances en la caracterización patogénica de Phytophthora spp. asociado al complejo “ Pudrición de cogollo” en palma africana Elaeis guineensis Jacq. Fitopatología Colombiana 31(1): 15-18. 1

Álvarez, E., Loke, J., Rivera, S. & G. Llano. 2002. Genética de la resistencia a pudrición causada por Phytophthora tropicalis en dos poblaciones segregantes de yuca (Manihot esculenta Crantz). Fitopatología Colombiana 26(2): 61-66. 1

Álvarez, E., McGee, D. & T. Harrington. 2008. Molecular variation and pathogenicity of isolates of Fusarium spp. affecting corn seed quality. Fitopatologia Colombiana 32(1): 11-17. 1

Álvarez, E., Ospina, C., Mejía, J. & G. Llano. 2004. Caracterización morfológica, patogénica y genética del agente causal de la antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides) en Guanábana (Annona muricata) en el Valle del Cauca. Fitopatología Colombiana 28(1): 1-8. 3

Álvarez, G., Hurtado, V., Oyoque, S., Mena, V. & P. Angoa. 2012. Actividad biocontroladora de bacterias nativas vs el hongo fitopatógeno Botrytis cinerea en frutos de fresa. En: Martínez, R., Ramírez, B. & G. Rojo. Recursos naturales y contaminación ambiental. Primera edición. Editorial de la Universidad Autónoma Indígena de México. 91-95pp. 6

Álvarez, R., Martín, R. & D. Quito. 2015. First report of Pineapple mealybug wilt associated virus-1 in Ecuador. British Society for Plant Pathology 31:15. 2

Ángel, A., Garrido, M. & A. Ascanio. 2009. Reacción de cultivares de maíz al potyvirus del mosaico del pasto johnson. Fitopatología Venezolana 22(2): 35-36. 1

Ángel, C., Álvarez, E., Tsubota, M. & S. Reyes. 2001. Erwinia chrysanthemi causante de manchas foliares y pudriones blandas en Cattleya spp. Lindl y Dendrobium phalaenopsis. En: Memorias XXII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 64pp. 1

Ángel, J., Hernández, E., Herrera, N., Gómez, L., Castro, Á., Sepúlveda, A. & E. Ebratt. 2014. Citrus huanglongbing: validation of Real-Time PCR (qPCR) for the detection of Candidatus Liberibacter asiaticus and Candidatus Liberibacter americanus in Colombia. Agronomía Colombiana 32(3):377-389. 5

Ángel, J., Hernández, E., Herrera, N., Gómez, L., Castro, Á., Sepúlveda, A. & E. Ebratt. 2014. Comparison of DNA extraction methods for detection of citrus huanglongbing in Colombia. Agronomía Colombiana 32(1):7-13. 2

Ángel, J., Martínez, J., Santamaría, M., Parada, S. & E. Ebratt. 2015. Identification and distribution of whiteflies (Hemiptera: Aleyrodidae) in tomato crops (Solanum lycopersicum) in Cundinamarca (Colombia). Agronomía Colombiana 34(1):42-50. 2

Ávila, G., Téliz, D., Vaquera, H., González, H. & R. Johansen. 2005. Progreso temporal del daño por trips (Insecta: Thysanoptera) en aguacate (Persea americana Mill.). Agrociencia 39(4): 441-447. 1

Ávila, R., Bayona, C., Rincón, Á. & H. Romero. 2014. Effect of replanting systems on populations of Strategus aloeus (L.) and Rhynchophorus palmarum (L.) associated with the oil palm OxG interspecific hybrid (Elaeis oleifera × Elaeis guineensis) in Southwestern Colombia. Agronomía Colombiana 32(2):224-231. 2

Ávila, Y., Carreño, A., Villegas, B., Blanco, J. & A. Cotes. 2001. Evaluación de hongos antagónicos para el control biológico de Phytophthora cactorum (Lebert y Cohn) Schroeter en patrones de manzano MM106. En: Memorias XXII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 32pp. 1

Baeza, C. & J. Aranzazu. 1989. Control integrado de la roya (Hemileia vastatrix B. y Br.), minador (Perileucoptera coffeella). En: Resúmenes X Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). V Reunión ALF (Asociación Latinoamericana de Fitopatólogos). XXIX Reunión anual APS- CD (American Phytopathological Society - Caribean División). Cali, Colombia. 59 pp. 1

Baeza, C. 1971. Nueva enfermedad de la soya en los departamentos del Valle y Cauca "la mancha angular" Septoria glycines hemmi. Acta Agronómica 21(2):83-85. 1

Bailez, O., Viana, A., De Lima, J. & D. Moreira. 2003. Ecology, behavior and bionomics. Life-history of the guava weevil, Conotrachelus psidii Marshall (Coleoptera: Curculionidae), under laboratory conditions. Neotropical Entomology 32(2): 203-207. 1

Baimey, H., Coyneb, D., Dagbenonbakinc, G. & B. Jamesa. 2009. Plant-parasitic nematodes associated with vegetable crops in benin: relationship with soil physico-chemical properties. Nematología Mediterranea 37: 227-236. 1

Baines, R., Cameron, J. & R. Soost. 1974. Four Biotypes of Tylenchulus semipenetrans in California. Identified, and their importance in the development of resistant Citrus Rootstocks. Journal of Nematology 6(2): 63-66. 1

Baiswar, P., Braun, U., Chandra, S. & S. Ngachan. 2009. First report of an Oidium sp.[neolycopersici] on Solanum betaceum in India. Australasian Plant Disease Notes. 4: 32-33. 1

Baker, C. & T. Harrington. 2005. Intersterility, morphology and taxonomy of Ceratocystis fimbriata on sweet potato, cacao and sycamore. Mycologia 97(1): 57-69. 1

Baker, C., Harrington, T. Krauss, U. & A. Alfenas. 2003. Genetic Variability and Host Specialization in the Latin American Clade of Ceratocystis fimbriata. Phytopathology 93(10): 1274-1284. 4

Balachowsky, A. 1959. Nuevas cochinillas de Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 10(41):337-361. 4

Balachowsky, A. 1959. Nuevas cochinillas de Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 10(41): 337-361. 2

Balazero, M. 2015. Caracterización fenologógica y morfológica de un ecotipo de caña de azúcar (Saccharum officinarum L.) en Paiján, La Libertad. Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Trujillo, Trujillo. Peru. 91 pp. 1

Balcázar, M., Rivera, A. & B. Pineda. 2003. Observaciones preliminares sobre el efecto in Vitro de bacterias antagonistas sobre el desarrollo de hongos aislados de semillas de Brachiaria brizantha. Fitopatología Colombiana 27(1): 33-36. 5

Balendres, M. A., & J. C. Bengoa, 2019. Diseases of dragon fruit (Hylocereus species): Etiology and current management options. Crop protection, 126, 104920. 1

Balmelli, G., Marroni, V., Altier, N., & R. García. 2004. Potencial del mejoramiento genético para el manejo de enfermedades en Eucalyptus globulus. Serie Técnica 143. Unidad de Agronegocios y Difusión del INIA. Montevideo. Uruguay. 44pp. 1

Baltazar, H. & M. Herrera. s.a. Estudio de bacterias en Eucalytus globulus Labill. Instituto de Investigación de la Facultad de Ciencias Forestales y del Ambiente Universidad Nacional del Centro del Perú, Centro de investigación. 12 pp. 1

Baquero, J. Valencia, M., Garcés, E. & I. Bustos. 1992. Reconocimiento y dispersión de hongos causantes del "Picamento" (Ray speck) en crisantemo (Chrysanthemum morifolium Ram CV Polaris) en condiciones de invernadero. Acta Biológica Colombiana 2(7-8): 149-165. 2

Barari, H., Alavi, V. & S. Badalyan. 2012. Genetic and morphological differences among populations of Sclerotinia sclerotiorum by microsatellite markers, mycelia compatibility groups (mcgs) and aggressiveness in North of Iran. Romanian Agricultural Research 29: 323-331. 1

Barbosa, F., Cardozo, D. & R. Jurado. 2001. Identificación de especies del genero, Meloidogyne en el cultivo de Lulo, Solanum quitoense L. en la región del Sumapaz San Bernardo y Pasca. En: Memorias XXII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 30-31pp. 7

Barbosa, F., Pfenning, L. & C. Casela. 2006. Peronosclerospora sorghi, o agente etiológico do míldio do sorgo. Fitopatología Brasileira 31:119-132. 1

Barbosa, M., Sharma, R. & J. Cares. 2005. Nematodes associated with banana genotypes in Rio Branco. Nematologia Brasileira 29(1): 91-94. 5

Barboza, M. 2009. Collaria scenica (Stal, 1859) (Hemiptera: Miridae) em Poaceas hibernais na região centro sul do Paraná: biologia e danos. Dissertação de Mestrado. Programa de Pós-Graduação em Agronomia. Universidade Estadual do Centro-Oeste. Guarapuava. 1

Barrera, A., Gómez, S. & G. Arbeláez. 1997. Determinación de razas fisiológicas de Fusarium oxysporum f. sp. dianthi en 8 fincas del grupo Chía cultivadoras de clavel, localizadas en la Sabana de Bogotá. Fitopatología Colombiana 21(2): 53-60. 1

Barrera, J. 2008. Coffee Pests and their Management. En: Capinera, J. Encyclopedia of Entomology. Springer Science. 2° Edición. Springer. 961-998pp. 5

Barreto, L., Oliveros, O., Acosta, O. & J. Peñaranda. 2000. Identificación del Badnavirus del marchitamiento de Piña asociado a cochinillas en Colombia. En: Memorias XXI Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 21pp. 1

Barriga, R. & A. Aranda. 2000. Nematodos fitoparásitos importantes en la zona tabacalera de Santander y Boyacá, Colombia. Fitopatología Colombiana 24(1): 10-14. 11

Barriga, R. & G. Cubillos. 1980. Principales nematodos fitoparásitos asociados con cultivos de plátano (Musa AAB y Musa ABB) en cuatro regiones de Colombia. Fitopatología Colombiana 9(2): 80-92. 8

Barriga, R., Cubillos, G. & L. Pérez. 1980. Control químico de nematodos en banano Cavendish, cv. Grand Naine, en la región de Uraba- Colombia. Fitopatología Colombiana 9(2): 58-70. 4

Barrios, C., Castillo, N., Bustillo, A. & C. Staines. 2020. Nuevos registros de Cephaloleia (Coleoptera: Chrysomelidae) plaga de la palma de aceite en Colombia. Revista Colombiana de Entomología 46(1): 1 - 4 2

Basso, I., Link, D. & O. Lopes. 1974. Entomofauna de algumas Solanaceas em Santa Maria, RS. Revista do Centro de Ciencias Rurais 4(3): 263-270. 1

Batool, A., Iftikhar, Y., Mughal S., Khan, M., Jaskani M., Abbas, M. & I. Khan. 2007. Citrus Greening Disease – A major cause of citrus decline in the world – A Review. Horticultural Science. 34 (4): 159–166 CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: diciembre, 2018). EPPO. 2018. European and Mediterranean Plant Protection Organization. https://gd.eppo.int/taxon/LIBEAS. (Ultimo acceso: diciembre, 2018) Resolución N° 00029064 "Por medio de la cual se hace una modificación al anexo de la Resolución 3593 de 2015" 1

Bauer, C., Marchezan, E., Fontana, I., Gomes, R. & M. Alves. 1997. Ocurrence of Meloidogyne graminicola em Santa Maria, RS. Ciência Rural 27(3): 501-502. 1

Bautista, M., Armbrecht, I. & A. Vásquez. 2020. The weevil Dynamis borassi (Coleoptera: Curculionidae: Dryophthorinae) associated with native palms in forests and disturbed areas in Buenaventura, Colombia. Revista Colombiana de Entomología 46(2): 1 - 8. 1

Beardsley, J. 1966. Hypogaeic mealybugs of the Hawaiian Islands (Homoptera: Pseudococcidae). Hawaiian Entomological Society 19(2): 151-155. 3

Bejarano, C., Laberry, R., Orrego, A. & J. Lozano. 1991. La pudrición negra del tallo y raíz de la yuca (Manihot esculenta) causada por Scytalidium sp. En: Memorias XII Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Manizales, Colombia. 97 pp. 1

Bekele, B., Abate, E., Asefa, A. & M. Dickinson. 2011. Incidence of potato viruses and bacterial wilt disease in the West Amhara Sub-region of Ethiopia. Journal of Plant Pathology 93(1): 149-157. 5

Belachew, K., Teferi, D. & L. Hagos. 2015. Coffee Thread Blight (Corticium koleroga): a Coming Threat for Ethiopian Coffee Production. Journal of Plant Pathology & Microbiology 6(9): 303. 2

Belezaca, C., Hidalgo, E., López, R. & K., Macías. 2020. Taladradores de la madera (Scolytidae) en plantaciones de Tectona grandis L.f. (Teca) del trópico ecuatoriano. Alternativa 21 (3): 49-54 1

Beltrán, J. & F. García. 1983. Comportamiento del gusano rosado de la India Pectinophora gossypiella (Saunders) en semilla de algodón almacenada. Acta Agronómica 33(2):43-47. 1

Ben-Dov, Y. 1994 A systematic catalogue of the mealybugs of the world (Insecta: Homoptera: Coccoidea: Pseudococcidae and Putoidae) with data on geographical distribution, host plants, biology and economic importance.. 100th Intercept Limited Andover, UK 686 pp. 1

Ben-Dov, Y. 1994. A systematic catalogue of the mealybugs of the world (Insecta: Homoptera: Coccoidea: Pseudococcidae and Putoidae) with data on geographical distribution, host plants, biology and economic importance.. 100th Intercept Limited Andover, UK 686 pp. 1

Benavides, G. 1961. El Xyleborus morigerus Blandford en Colombia. Cenicafé 12(1): 17-28. 1

Benavides, J. 2006. Incidencia y severidad de la roña de la papa causada por Spongospora subterranea (Wallr.) Lagerh. f. sp. subterranea Tomlinson en raíces y tubérculos de Diacol capiro y Parda pastusa en tres épocas de siembra en el departamento de Nariño y su efecto en los rendimientos. Tesis Magíster en Ciencias Agrarias con énfasis en Fitopatología. Facultad de Agronomía. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá D.C. Colombia. 75pp. 1

Benavides, M. & J. Orozco. 1989. El pasador de las ramas del cafeto. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 142. 4pp. 1

Benavides, M. & R. Cárdenas. 1983. El Gorgojo del café Araecerus fasciculatus De Geer. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 114. 4pp. 1

Benavides, M. 1974. Gusanos medidores en cafetales. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 33. 4pp. 1

Benavides, M., Saldarriaga, A. & I. Zenner. 1969. Gusano medidor del cafeto. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). Programa de Entomología, Departamento de Agronomía. Bogotá. Hoja divulgativa nro. 003. 2pp. 1

Benavides, P. & H. Arévalo. 2002. Manejo integrado: una estrategia para el control de la broca del café en Colombia. Cenicafé 53(1): 39-48. 1

Benavides, P., Gil, Z., Góngora, C. & A. Arcila. 2013. Manejo integrado de plagas. El gusano araña Phobethron hipparchia (Lepidoptera: Limacodidae). En: Manual del cafetero colombiano Tomo II. Investigación y tecnología para la sostenibilidad de la caficultura. Fedearación Nacional de Cafeteros (FNC), Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). 276-278pp. 1

Benavides, P., Vega, F., Romero, J., Bustillo, A. & J. Stuart. 2005. Biodiversity and biogeography of an important inbred pest of coffee, coffee berry borer (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae). Annals Entomological Society of America 98(3): 359-366. 3

Bendezu, R. 2017. Control de Meloidogyne sp. en vivero de Coffea arabica L. mediante quinoleína fenolica, Paecilomyces lilacinus y estiércol en la zona de Satipo. Tesis Ingeniero en Ciencias Agrarias. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional del Centro del Perú, Sapito. Perú. 60 pp. 1

Benítez, E. 2013. Presencia del pulgón marrón, Pentalonia nigronervosa (Hemiptera: Aphididae) en banano (Musa paradisiaca) de la variedad nanica, en Paraguay. Boletín del Museo Nacional de Historia Natural del (Paraguay):91-92. 1

Bernal, A., Martínez, I., Castellanos, M. & L. Isla. 2006. Empleo de cepas de bacterias antagonistas en el control de Stemphylium solani Webber en tomate bajo cultivo protegido. Centro Agrícola 33(3): 37-40. 1

Bernal, L., Pesca, L., Rodríguez, D., Cantor, F. & J. Cure. 2008. Plan de muestreo directo para Trialeurodes vaporariorum (Westwood) (Hemiptera: Aleyrodidae) en cultivos comerciales de tomate. Agronomía Colombiana 26(2):266-276. 1

Berry, J. 1997. Nematus oligospilus (Hymenoptera: Tenthredinidae), a recenty introduced sawfly defoliating willows in New Zealand. New Zealand Entomologist 20(1): 51-54. 1

Besoain, X. & E. Piontelli. 1999. Pudrición negra en raicillas de palto (Persea americana Mill.) por Cylindrocarpon destructans: patogenicidad y aspectos epidemiológicos. Boletín micológico. 14(1-2): 41-47. 1

Betancourt, M. & C. López. 2003. Reconocimiento preliminar de enfermedades en Yacón (Polimnia sonchifolia). En: Memorias XXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Armenia-Quindío, Colombia. 26pp. 5

Betancourth, C., Barco, O. & I. Rosas. 2007. Evaluación y transferencia de tecnología para tres genotipos promisorios de quinua dulce (Chenopodium Quinoa willd) en los Municipios de Pasto y Guaitarilla del Departamento de Nariño. Revista de Ciencias Agrícolas. 74- 87 pp. 1

Bezhin, K., Santel, H. & R. Gerhards. 2015. Evaluation of two chemical weed control systems in sugar beet in Germany and the Russian Federation. Plant Soil Environ 61(11): 489-495. 1

Bianchini, C. 1955. Las llagas del café en Costa Rica. Revista Biología Tropical 3(2): 203-235. 1

Bibliowicz, A. & S. Hernandez. 1998. Organismos fungosos presentes en las estructuras reproductivas de la pitaya amarilla. Trabajo de grado para optar titulo Ingeniero agronomo. Universidad Nacinal de Colombia. Facultad de Agronomía. Santafé de Bogotá. 49 p. 4

Bishop, A., Dennis, J., French, J., & P. Gardam. 2002. Going organic: a study of weed management in an intensive organic vegetable production system. En: 13th Australian Weeds Conference. 218-221 pp. 1

Bittara, F., Rodríguez, D., Hernández, A., Sanabria, M. & N. Méndez. 2013. Caracterización molecular y fitoquímica de ocho genotipos de papa (Solanum tuberosum L.) y su relación con la infección por Spongospora subterranea (Wallr.) Lagerh. Bioagro 25(1): 11-22. 1

Blancard, D. 2012. Tomato Diseases: A Color Handbook. Identification, biology and control. Second edition. Manson Publishing Ltda. London. UK. 688pp. 2

Blanco, Y. & A. Leyva. 2011. Determinación del período crítico de competencia de las arvenses con el cultivo del fríjol (Phaseolus vulgaris L.). Cultivos Tropicales 32(2):143-153. 6

Blanco, Y. & A. Leyva. 2013. Las arvenses y su entomofauna asociada en el cultivo del frijol (Phaseolus vulgaris, L.) posterior al periodo crítico de competencia. Avances en Investigación Agropecuaria 17(3): 51-56. 1

Blanco, Y. & A. Leyva. 2013. Las arvenses y su entomofauna asociada en el cultivo del frijol (Phaseolus vulgaris, L.) posterior al periodo crítico de competencia. Avances en Investigación Agropecuaria 17(3): 51-65. 1

Blanco, Y., Leyva, Á. & I. Castro. 2014. Determinación del período crítico de competencia de arvenses en el cultivo de maíz (Zea mays L.). Cultivos Tropicales 35(3):62-69. 1

Blancos, E., Fernández, J. & L. Cabrales. 1982. Nemátodos en raíces en el cultivo del cafeto (Coffeae arábica L) en el distrito de Marinca (Zona comprendida entre los 600 y 1200 m.s.n.m). Revista Agronómica 5(1/4): 69-83. 3

Bobadilla, C., Mejía, J. & R. Jurado. 1999. Identificación y distribución de las enfermedades del tomate de árbol (Solanum betacea, (Cav) Sendt), en la región del Sumapaz. En: Memorias XX Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Manizales, Colombia. 3pp. 10

Bolda, M. & S. Koike. 2015. Mildiu polvoroso en la fresa. En: Guias de producción. Comisión de la fresa de california Publicación nro. 12. 4pp. 1

Bonilla, C. & M. Guerrero. 2010. Albahaca (Ocimun basilicum L.) producción y manejo poscosecha. Corredor Tecnológico Agroindustrial. Cundinamarca, Secretaria de Competitividad y Desarrollo Económico. Colombia. 123pp. 1

Booth, C. & P. Holliday. 1972. Rosellinia pepo C.M.I. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria 354: 1-2. 2

Borges, E., de Almeida Bôdi, E., Harakava, R., Gregori, F. & Gonçalves, M. 2016. Occurrence and molecular analysis of quarantine virus in lily cultivation areas in Brazil. Pesquisa Agropecuária Brasileira 51(5): 615-622. 5

Botero, M., Ríos, G., Franco, G., Romero, M., Pérez, J., Morales, J., Gallego, J. & D. Echeverry. 2003. Identificación y espacialización de enfermedades asociadas a los cultivos de lulo (Solanum quitoense Lam), en el Eje Cafetero. Agronomía 11(1-2): 9-17. 4

Brailovsky, H. & C. Sánchez. 1982. Hemiptera-Heteroptera de México XXIX: Revisión de la familia Coreidae Leach; Parte 4. Tribu Anisoscelidini Amyot-Serville. Anales del Instituto de Biología de la Universidad Nacional Autónoma de México 53(1): 219-275. 2

Brammer, A. & W. Crow. 2001. Red Ring Nematode, Bursaphelenchus cocophilus (Cobb) Baujard (Nematoda: Secernentea: Tylenchida: Aphelenchina: Aphelenchoidea: Bursaphelechina) formerly Rhadinaphelenchus cocophilus. University of Florida, IFAS Extension, USA. nro. EENY236. 4 pp. 1

Brandão, M., Paluma, E., Kein, V., Mautone, L., Guimarães, E., Pereira, R. & J. Miguel. 1995. Plantas daninhas do estado do Rio de Janeiro: Acréscimo aos trabalhos já efetuados no estado. Planta daninha 13(2): 98-116. 3

Bravo, N., Pineda, B. & R. Hidalgo. 1996. La prueba Elisa en semillas de frijol y su relación con la bioactividad del virus del mosaico común del frijol (BCMV). Fitopatología Colombiana 20(2): 37-43. 1

Brenes, S. & R. Agüero. 2007. Reconocimiento taxonómico de arvenses y descripción de su manejo, en cuatro fincas productoras de piña (Ananas comosus L.) en Costa Rica. Agronomía Mesoamericana 18(2):239-246. 7

Brennan, E. B., Hrusa, G. F., Weinbaum, S. A. & W. Levison Jr. 2001. Resistance of Eucalyptus species to Glycaspis brimblecombei (Homoptera: Psyllidae) in the San Francisco Bay area. Pan-Pacific Entomologist 77(4): 249-253. 1

Briceño, A. 2002. Lista de insectos de importancia forestal en Venezuela. Revista Forestal Venezolana 46(1): 27-34. 2

Broadbent, L. 1976. Epidemiology and control of tomato mosaic virus. Annual review of Phytopathology 14: 75-96. 1

Brooks, F. 2006. List of Plant Diseases in American Samoa. Land Grant Technical Report nro. 44. Fred Brooks, Plant Pathologist. American Samoa Community College. Land Grant Program. 53pp. 1

Burbano, O., Arcila, A., Vasquez, A., Carrascal, F., Salazar Pertuz, B. Moreno, M., Romero, J. & J. Pulgarin. 2018. First Report of Bionectria pseudochroleuca Causing Dieback and Wilting on Avocado in the Serrania de Perijá, Colombia. Plant Disease 102 (1): 238-239. 1

Burckhardt, D., Lozada, P. & W. Díaz. 2008. First record of the red gum lerp psyllid Glycaspis brimblecombei (Hemiptera: Psylloidea) from Peru. Bulletin de la Societe Entomologique Suisse 81:83-85. 1

Buriticá, P. & M. Salazar. 2007. Nuevos registros de royas (Uredinales) potencialmente importantes en Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín 60(1): 3645-3655. 2

Buriticá, P. & V. Pardo. 1996. Flora uredineana colombiana. Revista de la academia colombiana de ciencias exactas, físicas y naturales 20 (77): 183-236. 526

Buriticá, P. 1995. Índice de los patógenos causantes de enfermedades de las plantas en Colombia referenciados a su hospedante. Facultad de Ciencias Agropecuarias Universidad. Nacional de Colombia. Boletín Técnico nro. 4.11-49pp. 7

Buriticá, P. 1998. La familia Phakopsoraceae en el Neotrópico - II. Géneros: Arthuria, Nothoravenelia, Uredopeltis, Kwelingia, Aplopsora y Pucciniostele. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 22(84):325-334. 1

Buriticá, P. 1999. Directorio de patógenos y enfermedades de las plantas de importancia económica en Colombia. Produmedios. Bogotá D.C., Colombia. 329pp. 11

Buriticá, P. 1999. La familia Phakopsoraceae en el neotrópico III. Géneros: Batistopsora y Phakopsora. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 23(87): 271-305. 6

Bustillo, A. & G. Sánchez. 1977. Los áfidos en Colombia, plagas que afectan los cultivos agrícolas de importancia económica. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA) y Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnología e Innovación (COLCIENCIAS). Bogotá D.C. Colombia. 96p. 2

Bustillo, A. 1976. Lista de áfidos (Homoptera: Aphididae) y sus huéspedes registrados en Colombia. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), Subgerencia de Investigación. Programa de entomología. Boletín Técnico nro. 44. 11pp. 1

Bustillo, A. 2008. Capítulo 25. Gusanos defoliadores del cafeto (Lepidoptera: Geometridae). En: Los insectos y su manejo en la caficultura colombiana. Centro Nacional de Investigacion de Café (CENICAFÉ). Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (FNC). Chinchiná, Caldas. Colombia. 355-359pp. 1

Bustillo, A., Orozco, J. & E. Hodson. 1991. Determinación del agente causal de la agalla de corona en Eucalyptus globulus Labill. y Eucalyptus cinerea F. Muell. En: Memorias XII Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Manizales, Colombia. 78 pp. 2

CA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2024. Reporte de resultados para Citrus x limón. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario R3924M0000017. Muestra nro. M3924M000184. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

Caballero, A. & A. Ramos. 2018. Hypogeal scale insects (Hemiptera:Coccomorpha) of the coffee agro-system in Chiapas state, Mexico, with description of a new species of Williamsrhizoecus Kozár and Konczné Benedicty (Rhizoecidae). The Journal of Basic and Applied Zoology 79:41. 3

Caballero, A., Pacheco,V., Bora, M., Rueda-Ramirez, D., Kondo, T., Ramos-Portilla,A., & Duarte, W. 2023.First report of Pseudococcus viburni (Hemiptera: Pseudococcidae) in Colombia: Morphometric and molecular analysis, with notes on morphological variation in specimens from Brazil and Colombia.Acta Zoologica 104 :309–322. 8

Caballero, A., Ramos, A. & T. Kondo. 2017. Scale insects (Hemiptera: Coccomorpha) on sugarcane in Colombia, with description of a new species of Tillancoccus Ben-Dov (Coccidae). Zootaxa 4258 (5): 490–500. 6

Caballero, A., Ramos, A., Gil, Z. & P. Benavides. 2018. Insectos escama (Hemiptera: Coccomorpha) en raíces de café de Norte de Santander y Valle del Cauca, Colombia y descripción de una nueva especie. Revista Colombiana de Entomología 44(1): 120-128 7

Caballero, L. 2015. Insectos escama (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia. Sede Bogotá. D.C. 40pp. 21

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 10 - 11 pp. 1

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 13pp. 1

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 14 - 15 pp. 1

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 16 - 17 pp. 1

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 17 pp. 1

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 18 - 19 pp. 1

Caballero. L. 2015. Insectos escamas (Hemiptera: Coccoidea) en la rizósfera de cafetales de Norte de Santander y Valle del Cauca. Tesis. Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. Colombia. 8 - 9 pp. 1

CABI. 2014. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Junio, 2014). 1

CABI. 2016. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Diciembre, 2016). 2

CABI. 2016. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Febrero, 2016). 1

CABI. 2016. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Noviembre, 2015). 7

CABI. 2016. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Noviembre, 2016). 4

CABI. 2017. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Abril, 2017). 6

CABI. 2017. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Julio, 2017). 6

CABI. 2017. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Junio, 2017). 2

CABI. 2017. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Marzo, 2017). 3

CABI. 2017. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Mayo, 2017). 11

CABI. 2017. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Septiembre, 2017). 1

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Abril, 2018). 1

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: abril, 2018). 7

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Agosto, 2018). 2

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Diciembre, 2018). 2

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Febrero, 2018). 1

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Julio, 2018). 2

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: junio, 2018). 3

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: mayo, 2018). 2

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Octubre, 2018). 4

CABI. 2018. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Septiembre, 2018). 7

CABI. 2019. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Diciembre, 2019) 1

CABI. 2019. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: Noviembre, 2019). 1

CABI. 2020. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: abril de 2020). 1

CABI. 2020. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: agosto, 2020). 3

CABI. 2020. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: julio, 2020). 3

CABI. 2021. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: MARZO 2024). 1

CABI. 2021. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: marzo, 2021). 2

CABI. 2021. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: octubre, 2021). 2

CABI. 2021. Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/cpc. (Último acceso: mayo, 2021). 1

Cabrales L., Ulloa, E. & R. Ballesteros. 1994. Estudio de las realciones insecto-enfermedad-nematodo-planta en el anillo rojo de la palma aceitera (Elaeis guineensis Jack.). Fitopatología Colombiana 18(1): 23-29. 2

Cabrales, L. 1992. Determinación de la contaminación por hongos e insectos en los granos de mayor consumo en Santa Marta. Fitopatología Colombiana 16(1): 98-105. 33

Cabrera, I., Toro, M., Sánchez, A., Ramírez, S., Baños, H., Suris, M. & M. Fernández. 2016. Coexistencia de Empoasca spp. (Cicadellidae: Typhlocybinae) y tisanópteros en Phaseolus vulgaris L. Revista de Protección Vegetal 31(3): 165-172. 1

Cabrera, M., Álvarez, R., Raimondo, M., Cúndom, M. & S. Gutiérrez. 2004. Importancia de las enfermedades de fin de ciclo de la soja (Glycine max), en el NEA. Comunicaciones científicas y tecnológicas 1-4pp. 1

Cai, G., Schneider, R. & G. Padgett. 2009. Assessment of lineages of Cercospora kikuchii in Louisiana for aggressiveness and screening soybean cultivars for resistance to Cercospora leaf blight. Plant Disease 93: 868-874. 1

Caicedo, E., Cardona, G. & M. de la Rotta. 1994. Reconocimiento de enfermedades fungosas en raíz y corona de plantas de fresa (Fragaria chiloensis Duch) cultivadas en la Sabana de Bogotá. En: Memorias XV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Santafé de Bogotá, Colombia. 23pp. 4

Caicedo, L., Varon E., Bacca, T., & A. Carabalí,. 2010. Daños ocasionados por el perforador del aguacate Heilipus lauri Boheman (Coleoptera: Curculionidae) en Tolima (Colombia). Revista Corpoica - Ciencia y Tecnología Agropecuaria 11(2), 129 -136. 1

Caicedo, X. 2015. Caracterización morfológica de hongos fitopatógenos en el cultivo de cebolla larga (Allium fistulosum) sector Lasso, Cantón Latacunga, Cotopaxi 2015. Tesis Ingeniero Agrónomo. Unidad Académica de Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturales. Universidad Técnica de Cotopaxi. Latacunga, Ecuador. 80pp. 1

Cajiao, C., Rodríguez, O. & J. Pulido. 1984. Ciclo de vida y hábitos de Pococera atramentalis Lederer (Pyralídae) plaga de la panoja del sorgo. Acta Agronómica 34(1):53-58. 3

Caković, D., Stešević, D., Topalović, A. & M. Knežević. 2016. Effect of different fertilization regimes on the weed community in swiss chard. Agriculture & Forestry 62(2): 173 - 191. 7

Calderón, H., Castro, M., Gilchrist, E., Márquez, E. & S. Jaramillo. 2003. Caracterización de la poblaciones de Phytophthora infestans presentes en los departamentos de Boyacá y Cundinamarca. Fitopatología Colombiana 27(1): 45-49. 2

Calderón, O. 1995. El mildeo velloso del estatice (Limonium latifollum) ocasionado por Peronospora sp. ASCOLFI Informa 21(2):27-28. 1

Calixto, C., López, M., Equihua, A., Lira, D. & V. Cetina. 2015. Crecimiento de Cedrela odorata e incidencia de Hypsipyla grandella en respuesta al manejo nutrimental. Bosque 36(2): 265-273. 1

Calvo, I. 2009. Cultivo de tomade de árbol (Cyphomandra betaceae). Area: Manejo integrado de cultivos / frutales de altura. Proyecto Microcuenca Plantón - Pacayas Boletín técnico nro. 8. Instituto Nacional de Innovación y Transferencia Agropecuaria (INTA). San José, Costa Rica. 4 pp. 1

Camacho, J., Güerere, P. & M. Quirós. 2002. Insectos y ácaros del guayabo (Psidium guajava L.) en plantaciones comerciales del estado Zulia, Venezuela. Revista de la Facultad de Agronomía 19(2):140-148. 2

Camejo, C., Parra, M., Hernández, J., Fernández, A. & J. Duran. s.a. Identificación de nematodos en cultivos de interés agronómico en el Estado Miranda, Venezuela. 5pp. 1

Campbell, C., Markin, G. & M. Johnson. 1993. Fate of Cyanotricha necyria (Lepidoptera: Notodontidae) and Pyrausta perelegans (Lepidoptera: Pyralidae) Released for Biological Control of Banana Poka (Passiflora mollissima) on the Island of Hawai'i. 1

Campiglia, F., Caporali, F., Radicetti, E. & R. Mancinelli. 2010. Hairy vetch (Vicia villosa Roth.) cover crop residue management for improving weed control and yield in no-tillage tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) production. European Journal of Agronomy 33: 94-102. 1

Campo, R., Jaraba, J. & C. De León. 1999. Reconocimiento del mildeo velloso del maíz en Tierraalta (Córdoba, Colombia). ASCOLFI Informa 25(3):29-31. 1

Campo, R., Jaraba, J. & C. de León. 1999. Reconocimiento del mildeo velloso del maíz en Tierraalta (Córdoba, Colombia). ASCOLFI Informa 25(3):29-31. 1

Campo, R., Medellín, M. & E. Sáenz. 2013. Evaluación de la resistencia de poblaciones de maracuyá amarillo (Passiflora edulis f. flavicarpa. Degener) a la antracnosis (Colletotrichum gloesporioides Penz). Fitopatología Colombiana 37(2): 39-42. 1

Campo, R., Millan, J. & F. Varón. 2001. Reconocimiento de nematodos en el sistema de producción de cebolla de rama en El Cerrito, Valle del Cauca. ASCOLFI Informa 27(2): 8-10. 1

Campo, R., Rodriguez, N. & J. Cadena. 2004. Efecto de la densidad de siembra del algodonero en las pudriciones de las cápsulas y en la producción. En: Memorias XXV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira-Valle del Cauca, Colombia. 28pp. 1

Campo, R., Rodríguez, N. & J. Cadena. 2009. Efecto de la densidad de siembra sobra la pudrición de la cápsula del algodonero y su producción. Fitopatología Colombiana 33(2): 37-41. 6

Campos, J. & León, G. 2022. Solicitud para modificar el estatus fitosanitario: nuevo reporte para virus de la leprosis de los cítricos (CiLVs). 11pp. 35

Camposano, M., Larrain, P. & J. Gonzalez. 1997. La mosca de las agallas del Chrysanthemum, Rhopalomyia chrysanthemi Ahlberg (Diptera: Cecidomyiidae) detectada en la IV región. Agricultura Técnica (Chile) 57:4: 299-301. 3

Canale, F. 1984. Situación de Pseudomonas solanacearum en la República Oriental del Uruguay. Seminario de Investigación y de Trabajo Sobre Avances en el Control de la Marchitez Bacteriana. Lima. Perú. 27-33pp. 1

Cannon, P. 2009. Dicheirinia binata. [Descriptions of Fungi and Bacteria]. IMI Descriptions of Fungi and Bacteria nro. 179. Sheet nro. 1783 CAB International, Wallingford UK. 1p. 2

Cañas, S. & R. Campo. 1995. Muerte descendente de la vid, variedad Isabella (Vitis labrusca), en Ginebra, Valle del Cauca. Resúmenes XVI Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 44 pp. 2

Capinera, J. s.a. Yellowstriped Armyworm, Spodoptera ornithogalli (Guenée) (Insecta: Lepidoptera: Noctuidae). IFAS Extension University of Florida 216:1-4. 1

Capoor, S., Rao, D. & S. Viswanath. 1967. Diaphorina citri Kuway., a vector of the greening disease of citrus in india. Indian Journal of Agricultural Science 37(6): 572-575. 2

Carabalí, C., Gómez, E., Huertas, C., Hernández, C. & M. Velasco. 2019. Identificación de especies asociadas al síndrome “cariseca” en uva (Vitis vinifera), en Colombia. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 77pp. 11

Carbonó, E. & Z. Cruz. 2005. Identificación de coberturas promisorias para cultivo de banano en la zona de Santa Marta, Colombia. Revista Intropica 2(1):7-22. 87

Cardeñosa, R. 1952. Investigaciones sobre la 'rayadilla' del platano (Musa sp.) En Colombia. Acta Agronómica 2(1):1-21. 2

Cardeñosa, R. 1952. Investigaciones sobre la 'rayadilla' del plátano (Musa sp.) En Colombia. Acta Agronómica 2(1):1-21. 1

Cardona, C., Rendón, F., García, J., López, A., Bueno, J. & J. Ramírez. 2001. Resistencia a insecticidas en Bemisia tabaci y Trialeurodes vaporariorum (Homoptera: Aleyrodidae) en Colombia y Ecuador. Revista Colombiana de Entomología 27(1-2): 33-38. 1

Cardozo, C., Gutiérrez, J. & J. Lenné. 1983. Efecto de la antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides(penz.) sacc. en el rendimiento y calidad de Stylosanthes guianensis (aubl) sw. Acta Agronómica 33(2):49-55. 1

Cardozo, C., Rodríguez, P. & M. Marín. 2009. Caracterización molecular del complejo de especies Ralstonia solanacearum en la zona bananera de Urabá. Agronomía Colombiana 27(2):203-210. 1

Cardwell, K., Hepperly, P. & R. Frederiksen. 1989. Pathotypes of Colletotrichum graminicola and seed transmission of sorghum anthracnose. Plant Disease 73(3): 255-257. 1

Cardwell, K., Schulthess, F., Ndemah, R. & Z. Ngoko. 1997. A systems approach to assess crop health and maize yield losses due to pests and diseases in Cameroon. Agriculture, Ecosystems & Environment 65(1): 33-47. 1

Carrero, M., 2023. Caracterización morfológica y molecular de aislamientos de Ceratocystis sp. provenientes de cultivos de cacao en Colombia. Tesis Maestría Magister en Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de Ciencias Agrarias, Departamento de Agronomía. Bogotá, Colombia. 106p. 1

Caruso, A., Licciardello, G., La Rosa, R., Catara, V. & P. Bella. 2016. Mixed infection of Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum and P. carotovorum subsp. brasiliensis in tomato stem rot in Italy. Journal of Plant Pathology 98(3):661-665. 1

Carvalho, E., Figueira, A., Machado, J., Araújo, D. & C. Machado. 2015. Variability of seed-borne Colletotrichum strains in cotton based on ITS1 and ITS2 ribossomal genes analysis. Bioscience Journal Uberlândia 31(3): 691-700. 1

Carvalho, L., Guzzo, C., Pitelli, R., Cecílio, A. & S. Bianco. 2010. The effects of the coexistence of weed communities on table beet yield during early crop development. Maringá 32(4):709-714. 1

Casanova, M., Jiménez, N., Hernández, A. & R. Crozzoli. 2012. Especies de Globodera asociadas con el cultivo de la papa (Solanum tuberosum L.) en Venezuela. Fitopatología Venezolana 25(1):16-23. 1

Casanueva, K., Fernández, E., Tejada, M., Vidal, U. & E. Paredes. 2016. Malezas hospedantes de fitoparásitos en diferentes zonas productoras de banano y plátano en las provincias de Artemisa y La Habana. Fitosanidad 20(3): 125-129. 6

Castañeda, A. 2008. Bioecología del barrenador grande de la semilla de aguacate Heilipus lauri Boheman (Coleoptera: Curculionidae) en la región central de México. Tesis de Doctorado en Ciencias. Colegio de Postgraduados. Montecillo, México. 83pp. 1

Castañeda, E., Johansen, R., Hernández, F. & E. Aparicio. 2011. Fluctuación poblacional y especies de trips en Aguacate en Coatepec Harinas, Estado De México. En: Actas VII Congreso Mundial del Aguacate. Cairns, Australia. 1-7pp. 1

Castaño, J. 1978. Trayectoria de la fitopatología en Colombia (1571-1974). Primera edición. Editorial Letras. Medellín, Colombia. 105pp. 2

Castaño, J. 1985. Microorganismos asociados con el manchado del grano y el efecto de éste sobre algunas etapas de desarrollo de la planta de arroz. Fitopatología Colombiana 11(2): 21-26. 7

Castaño, M. & F. Morales. 1990. Detección inmunoenzimática del virus de la macana del fique (Furcraea spp.). Fitopatología Colombiana 14(1): 29-31. 1

Castellano, G., Casassa, A., Ramírez, R., Pérez, E., Burgos, M. & R. Crozzoli. 2012. Nematodos fitoparásitos asociados a frutales estratégicos en el municipio Baralt del estado Zulia, Venezuela. Fitopatología Venezolana 25(1): 2-6. 2

Castellanos, J., Cáceres, M. & J. Bernal. 2001. Reconocimiento y clasificación de plantas asociadas al cultivo del tomate de árbol Cyphomandra betacea, posibles hospederas del nematodo Meoloidogyne sp. en tres municipios del departamento de Boyacá. En: Memorias XXII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 38pp. 8

Castellanos, S., Dardón, O., Ozaeta, M., Soto, G. & H. Córdova. 1982. Mildiu en Maíz. Descripción, incidencia y métodos de control en Guatemala. En: ICTA (Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas). Mildiu en maíz y sorgo. Guatemala. Folleto técnico nro. 19. 1-21pp. 1

Castilla, L., Nova, A. & L. Gómez. 1988. Identificación de nematodos fitoparásitos asociados con el cultivo de sorgo (Sorghum bicolor L. Moench) y su incidencia en el rendimiento, en la terraza de Ibague, Tolima. En: Resúmenes IX Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). San Juan de Pasto, Colombia. 8-9 pp. 2

Castillo, J. 2014. Identificación de especies de Meloidodyne spp. presentes en el municipio de Patzicía, Chimaltenango. Tesis Ingeniero Agrónomo con énfasis en Gerencia Agrícola. Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas. Universidad Rafael Landívar, Guatemala de la Asunción. Guatemala. 73 pp. 1

Castro, A., Romero, J., Osorio, J., Martínez, E. & J. Hio. 2007. Distribución temporal y espacial de fuentes de inoculo de Colletotrichum acutatum en el follaje sano de Tomate de Árbol. Fitopatología Colombiana 31(1): 1-5. 1

Castro, Á. & C. Rivillas. 2005. Biorregulación de Rhizoctonia solani en germinadores de café. Federación Nacional de Cafeteros (FNC)-Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 336. Chinchiná, Caldas, Colombia. 8pp. 1

Castro, B. & C. Zuluaga. 2012. Evaluación de coadyuvantes para el control de Llaga Macana (Ceratocystis fimbriata s.l.) en zocas de café. Fitopatología Colombiana 36(1): 27-32. 1

Castro, B. 1995. Antagonismo de algunos aislamientos de Trichoderma koningii, originados en suelo colombiano contra Rosellinia bunodes, Sclerotinia sclerotiorum y Pythium ultimatum. Fitopatología Colombiana 19(2): 7-18. 1

Castro, B. 1998. Incidencia de Macana debido a la poda de ramas bajeras en árboles de café. Federación Nacional de Cafeteros (FNC)-Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 252. Chinchiná, Caldas, Colombia. 8pp. 1

Castro, B. 2003. Gotera. Mycena citricolor Berk. Kurt. En: Gil, L., Castro, B. & G. Cadena. El estudio de las enfermedades del cafeto en Colombia. Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (FNC). Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Especial Impresiones. Medellín, Colombia. 128-132pp. 1

Castro, B. 2003. Mal de Hilachas o Arañera. Corticium koleroga Cooke. En: Gil, L., Castro, B. & G. Cadena. El estudio de las enfermedades del cafeto en Colombia. Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (FNC). Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Especial Impresiones. Medellín, Colombia. 133-136pp. 1

Castro, B., Carreño, Á., Galeano, N., Roux, J., Wingfield, M. & Á. Gaitán. 2013. Identification and genetic diversity of Rosellinia spp. associated with root rot of coffee in Colombia. Australasian Plant Pathology 42(5): 515–523. 2

Castro, B., Cortina, H. & P. Sánchez. 2010. Evaluación de injertos de café sobre patrones resitentes a Ceratocystis fimbriata Ell. Halts. Hunt. Cenicafé 61(1): 46-54. 1

Castro, B., Duque, H. & E. Montoya. 2003. Incidencia de Llagas radicales (Rosellinia spp.) en el sistema Café-Yuca en el departamento del Quindío. En: Memorias XXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Armenia-Quindío, Colombia. 32-33pp. 1

Castro, B., Leguizamón, J. & A. Lopéz. 1994. Determinación del agente causal de la mancha foliar de los cítricos Alternaria tenuissima en la zona cafetera colombiana. Resúmenes XV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Santafé de Bogotá, Colombia. 34 pp. 1

Castro, I. & A. Contreras. 2001. Manejo de plagas y enfermedades en el cultivo de la papa. Papas nativas de Chile. Fondo para la innovación (FIA), Universidad Austral de Chile, Ponencia alimentaria y forestal Chile. Imprenta Austral. Valdivia, Chile 72pp. 2

Castro, R. & K. Mejía. 2011. Preferencia alimentaria de Pagiocerus frontalis en variedades de maíz en el Distrito de Coya – Provincia de Calca. Seminario de investigación. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de San Antonio ABAD del Cusco. Cusco. Perú. 26pp. 1

Cathme, M. 2018. Identificación del agente causal y métodos de control de la pudrición del cormo en apio (Arracacia xanthorrhiza Bancroft) en Puerto Rico. Tesis. M.S. Protección de cultivos. Departamento de Cultivos y Ciencias Agroambientales. Universidad de Puerto Rico. Mayaguez, Puerto Rico. 5p. 1

CATIE (Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza). 1990. Guía para el manejo integrado de plagas del cultivo de repollo. Serie Técnica. Informe Técnico No. 150. 80 pp. 4

Caton, B., Mortimer, M., Hill, J. & D. Johnson. 2010. A practical field guide to weeds of rice in Asia. Second Edition. Los Baños (Philippines): International Rice Research Institute. 118pp. 1

Cavallazzi, G., Prieto, A. & R. Ariza. 1998. Biología y hábitos de la escama blanda de la familia Coccidae, plaga del cultivo de guanábana. Agronomía Colombiana 15(2-3):99-105. 4

Cárdenas, J. 1997. Aspectos epidemiológicos de Rosellinia bunodes (Berk. y Br.) agente causante de la llaga negra radical en café Coffea arabica L. Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE). Turrialba, Costa Rica. 20pp. 4

Cárdenas, R. & F. Posada. 2001. Los insectos y otros habitantes de cafetales y platanales. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Optigraf, Armenia, Quindío. Colombia. 250pp. 5

Cárdenas, R. & M. Benavides. 1973. El gusano cuernito del cafeto. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 26. 2pp. 1

Cárdenas, R. 1976. Biología del gusano medidor del cafeto Paragonia procidaria H.S. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Notas Técnicas 27(1): 45-48. 1

Cárdenas, R. 1977. Una nueva plaga del cafeto. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 72. 2pp. 1

Cárdenas, R. 1985. La palomilla de las ramas del cafeto Planococcus citri (Risso) (Homoptera: Pseudococcidae). Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 125. 2pp. 1

Ceballos, G., Orozco, C. & R. Navarro. 1993. Control con microorganismos antagónicos de Fusarium oxysporum causante del marchitamiento vascular de Pinus patula. Resúmenes XIV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Santa Marta, Colombia. 99 pp. 1

Cedeño, L. & E. Palacios. 1991. Antracnosis en mora de castilla(Rubus glaucus) causada por Glomerella cingulata en Venezuela. Fitopatología Venezolana 4(1): 17-20. 1

Cedeño, L., Briceño, A. & G. Fermín. 2010. Antracnosis en zábila causada por Colletotrichum gloeosporioides en la zona árida del estado Mérida, Venezuela. Fitopatología Venezolana 23(2):30-34. 1

Cedeño, M., & E. Palacios. 1991. Antracnosis en mora de Castilla (Rubus glaucus) causada por Glomerella cingulata en Venezuela. Fitopatología Venezolana 4(1):17-2. 2

Ceja, L., Mora, G., Téliz, D., Mora, A., Sánchez, P., Muñoz, C., Tlapal, B. & R. Torre. 2008. Ocurrencia de hongos y etiología de la secadera de la fresa con diferentes sistemas de manejo agronómico. Agrociencia 42(4):451-461. 1

Cellier, G., Moreau, A., Cassam, N., Hostachy, B., Ryckewaert, P., Aurela, L., Picard, R., Lombion, K. & A. Rioualec. 2014. First report of 'Candidatus Liberibacter asiaticus' associated with Huanglongbing on Citrus latifolia in Martinique and Guadeloupe, French West Indies. Plant Disease 98(5): 683. 6

Cellier, G., Moreau, A., Cassam, N., Hostachy, B., Ryckewaert, P., Aurela, L., Picard, R., Lombion, K. & A. Rioualec. 2014. First report of 'Candidatus Liberibacter asiaticus' associated with Huanglongbing on Citrus latifolia in Martinique and Guadeloupe, French West Indies. Plant Disease 98(5): 683. 13

Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza. 1992. Forest Pests in Central America: Field Guide. Manual Técnico nro. 4. English Edition. 52 pp. 2

Cerdas, M. & J. Castro. 2003. Manual práctico para la producción, cosecha, manejo poscosecha del cultivo de granadilla (Passiflora ligularis, Juss). Ministerio de Agricultura y Ganadería. San José, Costa Rica. 62pp. 2

Cermeli, M., Morales, P., Godoy, F., Romero, R. & O. Cárdenas. 2002. Presencia de la cochinilla rosada de la cayena Maconellicoccus hirsutus (Green) (Hemiptera: Pseudococcidae) en Venezuela. Entomotropica 17(1):103-105. 1

Cerna, L. & A. Chacón. 2010. El periodo crítico de la competencia de malezas con el cultivo de espinaca (Spinacia oleracea L.) var. Viroflay en el Valle de Santa Catalina. Pueblo continente 21(1): 243-252. 1

Cerna, L. & E. Alayo. 2004. Período crítico y oportunidad de control de malezas en cultivo de lechuga (Lactuca sativa L. W. Great Lakes). Revista Oficial de la Universidad Privada Antenor Orrego 15(22): 17-32. 2

Cerón, S., Forero, C. & C. García. 2005. Especies de Colletotrichum asociadas con la antracnosis en Lulo Solanum quitoense Lam. En: Memorias XXVI Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 7pp. 1

Cevallos, G. & J. Mantilla. 2008. Levantamiento de plagas insectiles de papa (Solanum tuberosum) en cuatro formaciones ecológicas de la Serranía Ecuatoriana. Tesis Ingeniero Agropecuario. Escuela Politécnica del ejercito, Sangolqui. Ecuador. 201 pp. 1

Chacón, K. 2014. Aislamientos de mohos presentes en frutos de Vaccinium corymbosum var. biloxi "arándano" almacenados bajo atmósfera controladas. Tesis Biológo - Microbiólogo. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo. Trujillo, Perú. 130 p. 5

Chamorro, C., Calvache, H., Cruz, M. & L. Molina. 1994. Reconocimiento de Hemipteros asociados a la rizosfera de palma de aceite, (Elaeis guineensis Jacq.) afectadas por marchitez sorpresiva en el Magdalena medio. En: Memorias XV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Santafé de Bogotá, Colombia. 68 pp. 2

Chang, H. 1988. Phytophthora species associated with strawberry fruit rot in Taiwan. Botanical Bulletin- Academia Sinica 29: 61-67. 5

Chaparro, E. & G. Trujillo. 2003. Enfermedades virales en el cultivo de yuca (Manihot esculenta Crantz) en algunos estados de Venezuela. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ) 20: 461-467. 1

Chaparro, H., Velásquez, H. & J. Orduz. 2013. Influencia del virus de la tristeza de los cítricos (CTV) en el comportamiento de la lima ácida Tahití (Citrus latifolia Tanaka) injertada sobre seis patrones en el piedemonte llanero de Colombia (1997 – 2008). Fisiología Vegetal. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA). Ciencia y Tecnología Agropecuaria 14(1): 33-38. 1

Chavan, S. & S. Korekar, 2011. A Survey of some medicinal plants for fungal diseases from osmanabad district of Maharashtra state. Recent Research in Science and Technology 3(5): 15-16. 1

Chaves, A., Villegas, B., Guzmán., O. & A. Valencia. 2019. Caracterización morfométrica, molecular y parasítica de Radopholus similis en el bajo occidente caldense (Co). En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 48pp. 1

Chaves, G. & L. Ortiz. 2015. Genetic variability of Papaya ringspot virus isolates in Norte de Santander – Colombia. Agronomía Colombiana 33(2):184-193. 1

Chaves, G., Guzmán, M. & L. Ortíz. 2013. Genetic structure and evidence of putative Darwinian diversifying selection in the Potato yellow vein virus (PYVV). Agronomía Colombiana 31(2):161-168. 2

Chaves, M. & J. Durán. 1999. Actualidad de las enfermedades que afectan la caña de azúcar en Costa Rica. XI Congreso Nacional Agronómico/ IV Congreso Nacional de Fitopatología 1999. 30pp. 3

Chavez, C. & M. Araya. 2001. Frequencia y densidades poblacionales de los nematodos parasitos de las raices del banano (Musa AAA) en Ecuador. Nematrópica 31(1): 25-36. 3

Chávez, C. & G. Granada. 1988. Supervivencia de Xanthomonas campestris pv. phaseoli agente causal de la bacteriosis del fríjol, bajo las condiciones del Valle del Cauca. Fitopatología Colombiana 12(1 y 2): 9-13. 1

Chiang, M., Chiang, B. & W. Grant. 1977. Transfer of resistance to race 2 of Plasmodiophora Brassicae from Brassica napus to cabbage (B. oleracea var. Capitata). I. Interspecific hybridization between B. napus and B. oleracea var. Capitata. Euphytica 26(2): 319-336. 1

Chiang, M., Chiang, B. & W. Grant. 1977. Transfer of resistance to race 2 of Plasmodiophora Brassicae from Brassica napus to cabbage (B. oleracea var. capitata). I. Interspecific hybridization between B. napus and B. oleracea var. capitata. Euphytica 26(2):319-336. 2

Chilima, C. & S. Leather. 2001. Within‐tree and seasonal distribution of the pine woolly aphid Pineus boerneri on Pinus kesiya trees. Agricultural and Forest Entomology 3: 139-145. 2

Chitamba, J., Manjeru, P., Chinheya, C., Mudada, N. & M. Handiseni. 2013. Plant-parasitic nematodes associated with banana (Musa spp.) in Rusitu Valley, Zimbabwe. Nematropica 43: 113-118. 2

Christensen, C., Meronuck, R. & D. Sauer. 1990. Moisture content, invasion by Aspergillus glaucus, and germ discoloration in blends of corn of different initial moisture contents. Plant Disease 74(12):985-988. 1

Chuquimarca, M. 2011. Evaluación en el laboratorio del comportamiento de cuatro fungicidas biológicos para el control de antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides Desmazieres y Montagne) en tomate de árbol (Solanum betaceum). Tesis de grado en Ingeniería Agronómica. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad de Cuenca. Ecuador. 129pp. 5

Cibrián D. (2013). Manual para la identificación y manejo de plagas en plantaciones forestales comerciales. Comisión Nacional Forestal (CONAFOR) y Universidad Autónoma de Chapingo, Texoco. México. 199-200 pp. 2

Cichón, L., Garrido, S. & J. Lago. 2016. Drosophila suzukii una nueva plaga presente en la Norpatagonia. Ediciones INTA. Estación Experimental Agropecuaria Alto Valle. Río Negro, Argentina.16pp. 1

Cifuentes, J. 2017. Huanglongbing e Diaphorina citri: estudos das relações patógeno-vetor-hospedeiro. Tesis Doctoral en Agronomía. Faculdade de Ciencias Agrarias e Veterinárias. Universidade Estadual Paulista - UNESP, Campus De Jaboticabal. Brasil. 133 pp 2

Cifuentes, J. 2017. Huanglongbing e Diaphorina citri: estudos das relações patógeno-vetor-hospedeiro. Tesis Doctoral en Agronomía. Faculdade de Ciencias Agrarias e Veterinárias. Universidade Estadual Paulista - UNESP, Campus De Jaboticabal. Brasil. 133 pp. 1

Cividanes, F., da Silva. F. & T. Monteiro. 2004. Distribuição de Leptopharsa heveae em seringal no Estado de São Paulo. Pesq. agropec. bras., Brasília 39(10): 1053-1056. 1

Cobo, L. 1981. Rhopalomia chrysanthemi (Ahlberg) una nueva plaga del crisantemo en Colombia. Revista Colombiana de Entomología 7(3,4): 23-28. 1

Coca, I. & I. Tolin. 2013. The potato late blight caused by Phytophtora infestans Mont de Bary as selection factor of phurejas potatoes (Solanum phureja Juz et Buk) in endemic areas of the Bolivian Andes. American Journal of Plant Sciences 4: 53-58. 1

Coelho, M., Bianco, S. & L. Carvalho. 2009. Interferência de plantas daninhas na cultura da cenoura (Daucus carota). Planta Daninha 27: 913-920. 1

Cofcewicz, E., Carneiro, R., Randig, O., Chabrier, C. & P. Quénéherve. 2005, Diversity of Meloidogyne spp. on Musa in Martinique, Guadeloupe, and French Guiana. Journal of Nematology 37(3):313–322 1

Constantino, L. & P. Benavides. 2015. El barrenador del tallo y la raíz del café, Plagiohammus colombiensis. Cenicafé 66(01): 17-24. 1

Constantino, L., Cadena-Castañeda, O., Cardona, J., Benavides, P. & C. Góngora. 2018. A new Colombian pest species of the genus Poecilocloeus Bruner (Orthoptera: Acrididae: Proctolabinae) on coffee, with a key to the Neotropical species. A Insecta Mundi Journal of World Insect Systematics: 0621: 1-25. 1

Constantino, L., Flórez, J., Benavides, P. & T. Bacca. 2011. Minador de las hojas del cafeto una plaga potencial por efectos del cambio climático. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 409. 12pp. 1

Contreras, N., Jiménez, O., Bonilla, M. & H. Nass. 2008. Identificación y caracterización de Leifsonia xyli subsp. xyli como patógeno de la caña de azúcar (Saccharum sp.) en la región centro occidental de Venezuela. Bioagro 20(2): 111-118. 1

Contreras, N., Jiménez, O., Bonilla, M. & H. Nass. 2008. Identificación y caracterización de Leifsonia xyli subsp. xyli como patógeno de la caña de azúcar (saccharum sp.) en la región centro occidental de Venezuela. Bioagro 20(2): 111-118. 1

Contreras, N., Jiménez, O., Bonilla, M. & H. Nass. 2008. Identificación y caracterización de leifsonia xyli subsp. xyli como patógeno de la caña de azúcar (Saccharum sp.) en la región centro occidental de Venezuela. Bioagro 20(2): 111-118. 1

Corazza, L., Belisario, A. & E. Forti. 1999. First report of root and collar rot by Sclerotium rolfsii on apple trees in Italy. Plant disease 83(7): 695. 1

Cordoba, R. & E. Arevalo. 2019. CB-P-5. Uso de Trichogramma sp. y Cotesia flavipes Cam. para el control de Diatraea spp en el cultivo de arroz. En: Resúmenes XLVl Congreso Sociedad Colombiana de Entomología (SOCOLEN). Medellín, Colombia. 662 pp. 1

Corrales, A., Martínez, A. & F. Morales. 2007. Caracterización molecular de los Begomovirus que afectan la producción de tomate (Lycopersicon esculentum) en Cundinamarca y Tolima, Colombia. Fitopatología Colombiana 31(2): 59-63. 1

Corrales, J. & A. López. 1991. El piojo blanco (Orthezia sp.) grave plaga que amenaza los cítricos. Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 165. 6pp. 1

Corrales, S., Varon, F. & N. Barrera. 1999. Reconocimiento de nematodos y efecto de Meloidogyne spp., en el cultivo de lulo Solanum quitoense Lam. Acta Agronómica 49(3-4): 43-47. 5

Correa, E., Marsiglia, O. & C. Fernández. 2012. Susceptibility of Corythaica cyathicollis Costa to a native isolation of Beauveria bassiana (Vuillemin). Agronomía Colombiana 30(2):236-241. 1

Correa, J., Navarro, R. & B. Gaviria. 2001. Etiología y manejo de la pudrición de raíces en Crisantemo var. Super White causada por el hongo Cylindrocarpon destructans. En: Memorias XXII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 65pp. 1

Cortés, I. & M. Forero de la Rota. 1998. Etiología de la enfermedad "hoja apergaminada" de la lechuga Lactuca sativa L. en cultivos de la Sabana de Bogotá. En: Memorias XIX Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). San Juan de Pasto, Colombia. 72pp. 1

Costa, A. 1940. Insetos do Brasil. 2 Tomo Hemípteros Capitulo XXII. Escola Nacional de Agronomia Série Didática nro. 3. 337 pp. 1

Cota, L., Costa, R., Silva, D., Parreira, D., Ferreira, P. & A. Nolasco. 2010. Especialização fisiológica de Exserohilum turcicum para o milho e sorgo. In: XXVIII Congresso Nacional de Milho e Sorgo. Goiânia, Brasil. 725-730. 1

Coto, D. & J. Saunders. 2001. Insectos plaga de la guanábana (Annona muricata) en Costa Rica. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 61:60-68. 1

Coto, D. & J. Saunders. 2001. Insectos plaga de la guanábana (Annona muricata) en Costa Rica. Manejo Integrado de plagas 61: 60-68. 1

Cotte, O. 1989. Oxydia vesulia (Cramer) (Lepidoptera, Geometridae), a geometrid caterpillar of coffee in Puerto Rico. Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico 73(2): 159-160. 3

Coutin, L. 1969. Weed control in liliaceous crops with propachlor. C. R. Conf. Com. Franc. mauv. Herbes (COLUMA). 108 -19 pp. 1

Couturier, G., Brailovsky, H. & R. Zucchi. 1993. Thlastocoris laetus Mayr, 1866 (Hemiptera: Coreidae: Acanthocerini) nueva plaga de la piña. Scientia Agricola Piracicaba 50(3): 517-520. 1

Córdoba, C. & T. León. 2010. Efecto del manejo agroecológico y convencional sobre la fluctuación de babosa en cultivos de lechuga en Tenjo, Cundinamarca (Colombia). Acta Biológica Colombiana 15(1): 115-128. 1

Córdoba, C., Varón, F., Huertas, C. & F. Marmolejo. 1999. Situación fitosanitaria del cultivo del maíz Zea mays L. en el Valle del Cauca. Fitopatología Colombiana 23(1): 35-42. 7

Crozzoli, R., Lamberti, F., Greco, N. & D. Rivas. 1998. Nematodos fitoparasiticos asociados con los citricos en Venezuela. Nematologia Mediterranea 26: 31-58. 1

Cuellar, C., Gaviria, J & J. Montoya. 2019. HNE-P-17. HNE-O-27. Ciclo de vida de Dynamis borassi (Coleoptera: Dryophthoridae) en condiciones de laboratorio. En: Resúmenes XLVl Congreso Sociedad Colombiana de Entomología (SOCOLEN). Medellín, Colombia. 662 pp. 1

Cuenca, M., Marbán, N. Vargas, M. & A. Rebollar. 2012. Prospección fitonematológica en viñedos del Valle de Guadalupe, B.C. México. Nematropica 42(1): 26-33. 1

DAFF (Department of Agriculture, Fisheries and Forestry). 2013. Final pest risk analysis report for Drosophila suzukii. Canberra. Australia. 139 pp. 1

Daniel, J. & B. Boher. 1978. Ecology of cassava bacterial blight: Epiphytic survival of Xanthomonas manihotis on aerial parts of the cassava plant. In: International Conference on Plant Pathogenic Bacteria. Institut National de la Recherche Agronomique (INRA). Proceedings. Angers, France. 763-771pp. 1

Daza, L. & J. De la Cruz. 1983. Reconocimiento entomológico en el cultivo de la curuba (Passiflora mollissima (HBK) Bailey) en la cuenca del rio amaime-Valle. Acta Agronómica 33(1):37-43. 16

Dávila, E. 1993. Estudios preliminares de dos problemas fitosanitarios de la cebolla de rama, Allium fistulosum L., en la cuenca del Lago de Tota. Resúmenes XIV Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Santa Marta, Colombia. 53 pp. 1

De Assis, C., Aguiar, R., Holtz, A., De Olivera,E., Mamedes, A., Louzada, J. M., Prucoli, R., de Paula, J. J. & T. Rodrigues.2023. Population dynamics of thrips (Insecta: Thysanoptera) in cut chrysanthemum cultivated under photoselective screens.Journal of Entomology and Zoology Studies 11(2): 57-63. 1

De La Rotta, M. 1988. Sclerotinia en claveles de la Sabana de Bogotá. En: Resúmenes IX Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). San Juan de Pasto, Colombia. 46-47 pp. 1

De la Torre, P., Suárez, A. & A. González. 2010. Presencia del ácaro Raoiella indica Hirst (Acari: Tenuipalpidae) en Cuba. Revista de Protección Vegetal 25(1):1-4. 1

De León, C. 2003. Enfermedades importantes del maíz en Colombia. Fitopatología Colombiana 27(2): 37-44. 12

De Magistris, A.. 2017. Descripción botánica, ecología y aprovechamiento alimenticio de hierbas silvestres y malezas de los alrededores de Buenos Aires. Parte 1. Revista de Divulgación Técnica Agropecuaria, Agroindustrial y Ambiental 4 (3): 3-34. 1

De Queiroz, D. & D. Burckhardt. 2007. Introduced Eucalyptus psyllids in Brazil. Journal of Forest Research 12: 337-344. 1

De Souza, V., Bonfim, M., Antedomenico, S. & M. Inomoto. 2015. First report of Meloidogyne javanica infesting noni (Morinda citrifolia) in Brazil. New Disease Reports 31:12. 1

De Waele, D. & E. Jordaan. 1988. Plant-parasitic nematodes on field crops in South Africa. 2. Sorghum. Revue Nématol 11(2): 203-212. 1

Del Sent, A., Ribeiro, L. & W. Morandi. 2016. Utilização de papel jornal no controle de plantas daninhas e desenvolvimento de diferentes cultivares de cenoura. En: VII FICE – Feira de Iniciação Cientifica e Extensão do Instituto Federal Catarinense. Camboriú, Brasil. 1-4 pp. 1

Delchev, G. & T. Barakova. 2017. Efficacy of new herbicides and herbicide combinations on coriander (Coriandrum sativum L.). En: VIII International Scientific Agriculture Symposium. Faculty of Agriculture, University of East Sarajevo. Jahorina, Bosnia and Herzegovina. 1130-1135. 1

Delfino, M., Monelos, H., Peri, P. & L. Buffa. 2007. Áfidos (Hemiptera, Aphididae) de interes económico en la provincia de Santa Cruz. Revista de. Investigaciones Agropecuarias 36(1): 147-154. 1

Delgado, 2011. Nicaraguan fungi: a checklist of hyphomycetes. Mycotaxon 115:1-31 1

Delgado, C., Castaño, J. & B. Villegas. 2013. Caracterización del agente causante de la roña del maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa Degener) en Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 37(143):215-227. 3

Delgado, L. & G. Arbeláez. 1990. Control de Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary en crisantemo y habichuela con diferentes aislamientos de Trichoderma y con fungicidas. Agronomía Colombiana 7(1-2):33-39. 2

Delgado, M., Ortiz, A., Guevara, Y. & L. Subero. 2002. Evaluación sanitaria de semillas de cuatro variedades de arroz en Venezuela. Agronomía Tropical 52(2): 223-234 1

Delgado, N. 2005. Caracterización morfológica de los Sesiidae (Insecta: Lepidoptera) perforadores del fruto del cacao (Theobroma cacao L.), presentes en la región costera del estado Aragua, Venezuela. Entomotropica 20(2):97-111. 1

Delhey, R., Kiehr. M., Allievi, M., Lusto, J., Frayssinet, S., Sidoti, B., Kröger, I., Paoloni, P., Zappacosta, D. & A. Servera. 2009. Sclerotinia sclerotiorum en plantas cultivadas e invasoras del Sur Pampeano y Norte Patagónico, Argentina. Revista Internacional de Botánica Experimental 78:111-115. 2

Denmark, H., Fausulo, T. & J. Funderburk. 2005. Cuban Laurel Thrips, Gynaikothrips ficorum (Marchal) (Insecta: Thysanoptera: Phlaeothripidae). DPI Entomology Circular 59. 1

Depuydt, S. Putnam, M. Holsters, M. & D. Vereecke. 2008. Rhodococcus fascians, an emerging threat for ornamental crops. Floriculture, ornamental and plant biotechnology: advances and topical issues, 5, 1. 1

Depuydt, S. Putnam, M. Holsters, M. & D. Vereecke. 2008. Rhodococcus fascians, an emerging threat for ornamental crops. Floriculture, ornamental and plant biotechnology: advances and topical issues. 5. 1. 1

Dey, S. & A. Chakraborty. 2013. Screening of potato cultivars against common scab disease (Streptomyces scabies) in naturally infested field. Journal of Mycopathological Research 51(1): 173-175. 1

Diaz, J. 2023. Incidencia en la Pudrición del cladodio en el Cultivo de Pitahaya (Selenicereus spp) Trabajo de titulación Ingeniero Agronomo. Universidad Técnica de Bobahoyo. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Escuela de Agricultura, Silvicultura, Pesca y Veterinaria. Babahoy, Ecuador. 31p. 1

Diaz, V. Equihua, A. Romero, J. y L. Vallejo. 2020. Contribuciones al conocimiento de Heilipus trifasciatus en Colombia. Boletın del Museo de Entomología de la Universidad del Valle 19(2):28-34. 1

Diaz, V. Romero, J. González, H. Girón, J. Bautista, N. Castañeda, A. Anzaldo, S. y A. Lourennção. 2024. Host plants of the weevil genus Heilipus Germar, 1824 (Coleoptera, Curculionidae, Molytinae, Molytini, Hylobiina). Contributions to Entomology 74 (2): 217–234. 1

Ding, F., Wang, G., Yi, G., Zhong, Y., Zeng, J. & B. Zhou. 2005, Infection of wampee and lemon by the citrus huanglongbing pathogen (Candidatus Liberibacter asiaticus) in china. Journal of Plant Pathology 87(3): 207-212. 28

Ding, F., Wang, G., Yi, G., Zhong, Y., Zeng, J. & B. Zhou. 2005, Infection of wampee and lemon by the citrus huanglongbing pathogen (Candidatus Liberibacter asiaticus) in china. Journal of Plant Pathology 87(3): 207-212. 14

Diningsih, E., Suastika, G., Damayanti, T. & S. Susanto. 2015. Identification and characterization of carmovirus on carnation (Dianthus caryophyllus l.) in west java, Indonesia. Agrivita 37 (2): 108-114. 3

Dizon, T., Pinili, M. & F. Cruz. 2010. Response of Philippine banana (Musa spp.) cultivars to Radopholus similis (Thorne) and Meloidogyne incognita chitwood under greenhouse conditions. Philippine Journal of Crop Science 35(1): 36-51. 2

Díaz, A. 2007. Manejo fitosanitario del Cultivo de Lulo Solanum quitoense. En: Escobar, M., Díaz, A., Leal, A. & M. Angarita. Principios de sistemas agroforestales y avances en la protección fitosanitaria en el departamento de Santander, Colombia. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), Corporación Autónoma Regional para la Defensa de la Meseta de Bucaramanga (CDMB). Litografía la Bastilla Ltda. Bucaramanga, Santander. Colombia. 19-28pp. 1

Díaz, A. 2007. Manejo fitosanitario del cultivo de Lulo Solanum quitoense. En: Escobar, M., Díaz, A., Leal, A. & M. Angarita. Principios de sistemas agroforestales y avances en la protección fitosanitaria en el departamento de Santander, Colombia. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), Corporación Autónoma Regional para la Defensa de la Meseta de Bucaramanga (CDMB). Litografía la Bastilla Ltda. Bucaramanga, Santander. Colombia. 19-28pp. 16

Díaz, V., Cicedo, A.M.,& A. Carabalí,. 2017. Ciclo de Vida y Descripción Morfologica de Heilipus Lauri Boheman (Coleoptera: Curculionidae) en Colombia. Acta Zoologica Mexicana. 33 (2): 231-241 pp. 1

Díaz, W. 1982. Daños de Euxesta eluta y E. mazorca (Dipt.:Otitidae) sobre maíces amiláceos en la Costa Central del Perú. Revista Peruana de Entomología 25(1):51-53. 1

Domíngez, J. & L. Marrero. 2010. Catálogo de la entomofauna asociada a almacenes de alimentos en la provincia de Matanzas. Fitosanidad 14(2): 75-82. 1

Domínguez, A., Mendoza, A., Guerri, J., Cambra, M., Navarro, L., Moreno, P. & L. Peña. 2002. Pathogen-derived resistance to Citrus tristeza virus (CTV) in transgenic Mexican lime (Citrus aurantifolia (Christ.) Swing.) plants expressing its p25 coat protein gene. Molecular Breeding 10(1/2): 1-10. 1

Doucet, M. & J. Pinochet. 1992. Occurrence of Meloidogyne spp. in Argentina. Supplement to Journal of Nematology 24(4S):765-770. 3

Doucet, M. & P. Lax. 2007. El género Meloidogyne y su situación con respecto a la agricultura en la Argentina. Laboratorio de Nematodología. Facultad de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. Argentina. 31-49pp. 1

Durigan, J., Timossi, P. & G. Leite. 2004. Controle químico da tiririca (Cyperus rotundus), com e sem cobertura do solo pela palha de cana-de-açúcar. Planta Daninha, Viçosa-MG 22(1):127-135. 1

Duyck, P., Pavoine, S., Tixier, P., Chabrier, C. & P. Quénéhervé. 2009. Host range as an axis of niche partitioning in the plant-feeding nematode community of banana agroecosystems. Soil Biology and Biochemistry 41(6):1139-1145. 2

Dyer, L. 1997. Effectiveness of caterpillar defenses against three species of invertebrate predators. Journal of Research on the Lepidoptera 34:48-68. 1

Ebratt, E., Acosta, R., Martínez, O., Guerrero, O. & W. Turizo. 2013. Tomato spotted wilt virus (TSWV), weeds and thrip vectors in the tomato (Solanum lycopersicum L.) in the Andean region of Cundinamarca (Colombia). Agronomía Colombiana 31(1):58-67. 4

Ebratt, E., Rubio, L., Costa, V., Castro, A., Zambrano, M. & J. Ángel. 2011. Diaphorina citri (Kuwayama, 1907) y Tamarixia radiata (Waterson, 1922) en cítricos en el departamento de Cundinamarca, Colombia. Agronomía Colombiana 29(3): 487-493. 1

Echeverría, A., Carmona, M. & S. Gutiérrez. 2013. The fungus Trichoconiella padwickii is one of the main pathogens of rice seed in the province of Corrientes, Argentina. Tropical Plant Pathology 38(4): 346-348. 50

Echeverría, V. 2013. Evaluación del prendimiento del injerto de naranjilla (Solanum quitoense) en dos porta injertos (Solanum arboreum, Solanum hirtum) en las cuatro fases lunares en la zona agroecológica de Caluma.Tesis de grado para el título de Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Recursos Naturales y del Ambiente. Universidad Estatal de Bolívar. 96pp. 3

Echeverry, A., Rojas, M. & R. Zarate. 1983. Efecto de la hidrotermoterapia a la semilla de soya (Glycine max (L.) merril) en el control de la decoloración purpura Cercospora kikuchii (Matsumoto & Tomoyasu) Gardner. Acta Agronómica 33(3):53-59. 1

Edmunds, J. 1971. La asociación de Rotylenchulus sp. con raíces del banano Robusta y Commelina sp. en las Islas de Barlovento. Nematropica 1(1):19-20. 1

Edquén, M. 2019. Fungosis del arándano (Vaccinium corymbosum L.) var. biloxi en el Distrito De Jesús - Cajamarca. Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ciencias Agrarías. Universidad Nacional de Cajamarca. Cajamarca, Perú. 122 p. 1

Edwards, S. & A. Ploeg. 2014. Evaluation of 31 Potential biofumigant Brassicaceous plants as hosts for three Meloiodogyne Species. Journal of Nematology 46(3):287–295. 1

El Zamorano, F. 1992. Inventario agroecológico de los cultivos de ayote, banano, frijol, guanábana, maíz, melón, pepino, repollo, sandia y sorgo en diferentes zonas agroecológicas de Honduras. Centro de Inventario Agroecológico y Diagnostico. 5

El Zamorano, F. 1992. Inventario agroecológico de los cultivos de ayote, banano, frijol, guanábana, maíz, melón, pepino, repollo, sandia y sorgo en diferentes zonas agroecológicas de Honduras. Centro de Inventario Agroecológico y Diagnostico. Departamento de Protección vegetal. Escuela Agrícola Panamericana. Honduras. 117pp. 1

El-Nagdi, W., Haggag, K., Abd-El-Fattah, A. & H. Abd-El-Khair. 2011. Biological control of Meloidogyne incognita and Fusarium solani in sugar beet. Nematologia Mediterranea 39(1):59-71. 1

Elango, D., Holden, A. & C. Prior. 1993. The potential of plant pathogens collected in Trinidad for biological control of Chromolaena odorata (L.) King & Robinson. International Journal of Pest Management 39 (4): 393-396. 1

Elango, F. & J. Lozano. 1979. Transmición de Xanthomonas manihotis por semilla sexual. Fitopatología Colombiana 8(1): 15-19. 1

Englehard, A. 1980. Symptoms and control of botrytis on statice. Ornamentals northwest archives 4(2): 10-11. 1

Engwali, F., Nfor, T. & K. Alain. 2013. On-Farm Evaluation of Deleafing Frequency on the Severity of Black Sigatoka Disease (Mycosphaerella fijiensis Morelet) and Yield of Banana (Musa spp). American Journal of Experimental Agriculture 3(3):595-605. 1

EPPO (2020) Liberibacter asiaticus. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int. Fecha de consulta: Febrero, 2020 1

EPPO (2020) Liberibacter asiaticus. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int. Fecha de consulta: Marzo, 2021 1

EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization). 2018. PQR Database on quarantine pests. http://www.eppo.int (Último acceso: Agosto, 2021). 2

EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization). 2018. PQR Database on quarantine pests. http://www.eppo.int (Último acceso: Diciembre, 2019). 1

EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization). 2020. Drosophila Suzukii (DROSSU). En: https://gd.eppo.int/taxon/DROSSU (Último acceso: noviembre de 2020). 1

EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization). 2020. PQR Database on quarantine pests. En: https://gd.eppo.int/taxon/THEKMI/hosts. (Último acceso: octubre, 2020). 4

EPPO. 2020. Liberibacter asiaticus. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int. Fecha de consulta: Febrero, 2020 1

EPPO. 2020. Liberibacter asiaticus. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int. Fecha de consulta: Marzo, 2021 1

EPPO. 2020. Liberibacter asiaticus. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int. Fecha de consulta: Septiembre, 2021 1

EPPO. 2021. Scirtothrips dorsalis. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int/taxon/SCITDO/hosts. (Último acceso: marzo, 2021). 1

EPPO. 2021. Thrips palmi. EPPO datasheets on pests recommended for regulation. https://gd.eppo.int/taxon/THRIPL/hosts. (Último acceso: marzo, 2021). 1

Escalona, Y. & N. Contreras. 2011. Primer reporte de la mancha bacteriana en parchita (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa) en Venezuela. Bioagro 23(1): 69-75. 1

Escalona, Y., Rodríguez, D. & A. Hernández. 2011. Rhizoctonia solani Kühn aislado de papa (Solanum tuberosum L.) en los estados Táchira, Mérida, Trujillo y Lara. I. Caracterización cultural. Bioagro 23(3):161-168. 1

Escobar, C. 1962. Enfermedades de la caña de azúcar (Saccharum officinarnm L.) En el valle del Cauca. Acta Agronómica 12(1-2):49-123. 11

Escobar, H. & R. Lee. 2009. Manual de producción de Tomate bajo invernadero. Segunda edición. Fundación Universitaria Jorge Tadeo Lozano. Cuadernos del Centro de Investigaciones y Asesorías Agroindustriales. Bogotá D.C. Colombia. 180pp. 1

Escobar, R., Rodríguez, M., Alba, J., Fernández R., Baccarin, P., Castelo, M., Boiteux, L. & M. Fonseca. 2010. Resistencia a Tuta absoluta en una entrada de la especie silvestre de tomate Solanum pimpinellifolium. Phytoma España 217:126-127. 1

Esfahani, M. 2009. Distribution and identification of root-knot nematode species in tomato fields. Mycopath 7(1): 45-49. 1

Espinosa, G., Hérnandez, C. & J. Morales. 2013. Manual de malezas y catálogo de herbicidas para el cultivo de la caña de azúcar en Guatemala. Centro Guatemalteco de Investigación y Capacitación de la Caña de Azúcar (CENGICAÑA ). Guatemala. Guatemala. 97pp. 4

Espinosa, M., Fuentes, K., Jaraba, J. & Z. Lozano. 2004. Nematodos fitoparasitos asociados al cultivo de Papaya (Carica papaya L.) en Córdoba. Revista Temas Agrarios 9(1): 13-20. 12

Espinoza, N. & M. Navarro. 2010. Dinámica poblacional de arvenses en el cultivo de Soya (Glycine max (L.) Merril) manejado de forma orgánica y convencional. Tesis Ingeniero en Sistemas de Protección Agrícola y Forestal. Facultad de Agronomía. Universidad Nacional Agraria, Managua. Nicaragua. 30 pp. 1

Esquivel, V., Cano, O. & E. López. 1997. Control químico de malezas en fríjol (Phaseolus vulgaris L.) en el estado de Veracruz. Agronomía Mesoamericana 8(1):53-58. 1

Estrada, E., García, M., Gutierrez, A., Cardozo, I., Sanchez, M., Baena, D. & F. Vallejo. 2004. Cultivo de Zapallo variedad unapal bolo verde y unapal mandarino.Programa de investigación en hortalizas. Universidad Nacional sede Palmira. Colombia. 19 pp. 1

Estrada, E., Gómez, E., Huertas, C., Mesa, N., Mena, Y., Imbachi, K., Salazar, J., Cobo, G., López, R., Reina, R., Hernández, C., Vega, C., Álvarez, L., García, Y., Montenegro, D., Benítez, S., Vásquez, D., Sánchez, O., Sánchez, E., Ramos, P., Marulanda, H., Londoño, L., Sánchez, O., Gamboa, P., Romero, R., Henao, E., Yanga, Y., Vidal, Y., Tenorio, M., Velásquez, D., Ojeda, L., García, A. & M. Velasco. 2014. Cultivo de fresa. En: Diagnóstico Fitosanitario en Trece Renglones Productivos Frutícolas del Departamento del Valle del Cauca. Universidad Nacional de Colombia. Sede Palmira. Primera edición. FERIVA S.A. 22-23pp. 5

Estrada, E., Gómez, E., Huertas, C., Mesa, N., Mena, Y., Imbachi, K., Salazar, J., Cobo, G., López, R., Reina, R., Hernández, C., Vega, C., Álvarez, L., García, Y., Montenegro, D., Benítez, S., Vásquez, D., Sánchez, O., Sánchez, E., Ramos, P., Marulanda, H., Londoño, L., Sánchez, O., Gamboa, P., Romero, R., Henao, E., Yanga, Y., Vidal, Y., Tenorio, M., Velásquez, D., Ojeda, L., García, A. & Velasco, M. 2014. Cultivo de fresa. En: Diagnostico Fitosanitario en trece renglones productivos frutícolas del departamento del Valle del Cauca. Universidad Nacional de Colombia. sede Palmira. Primera edición. FERIVA S.A. 22-23pp. 3

Estrada, E., Gómez, E., Huertas, C., Mesa, N., Mena, Y., Imbachi, K., Salazar, J., Cobo, G., López, R., Reina, R., Hernández, C., Vega, C., Álvarez, L., García, Y., Montenegro, D., Benítez, S., Vásquez, D., Sánchez, O., Sánchez, E., Ramos, P., Marulanda, H., Londoño, L., Sánchez, O., Gamboa, P., Romero, R., Henao, E., Yanga, Y., Vidal, Y., Tenorio, M., Velásquez, D., Ojeda, L., García, A. & Velasco, M. 2014. Cultivo de piña. En: Diagnostico Fitosanitario en trece renglones productivos frutícolas del departamento del Valle del Cauca. Universidad Nacional de Colombia. Sede Palmira. Primera edición. FERIVA S.A. 37-38pp. 3

Estrada, E., Gómez, E., Huertas, C., Mesa, N., Mena, Y., Imbachi, K., Salazar, J., Cobo, G., López, R., Reina, R., Hernández, C., Vega, C., Álvarez, L., García, Y., Montenegro, D., Benítez, S., Vásquez, D., Sánchez, O., Sánchez, E., Ramos, P., Marulanda, H., Londoño, L., Sánchez, O., Gamboa, P., Romero, R., Henao, E., Yanga, Y., Vidal, Y., Tenorio, M., Velásquez, D., Ojeda, L., García, A. & Velasco, M. 2014. Cultivo de piña. En: Diagnostico Fitosanitario en trece renglones productivos frutícolas del departamento del Valle del Cauca. Universidad Nacional de Colombia. sede Palmira. Primera edición. FERIVA S.A. 37-38pp. 4

Evans, H. 2007. Cacao diseases—The trilogy revisited. Phytopathology 97:1640-1643. 1

Eyre, M., Critchley, C., Leifert, C. & S. Wilcockson. 2011. Crop sequence, crop protection and fertility management effects on weed cover in an organic/conventional farm management trial. European Journal of Agronomy 34: 153-162. 1

Fallas, E., Arguedas, M. & R. Briceño. 1993. Dispersión y métodos de cría de Dictyla monotropidia (Hemiptera: Tingidae). Revita Biologica Tropical 41(3): 509-513. 1

Fallas, G., Sarah, J. & M. Fargette. 1995. Reproductive fitness and pathogenicity of eight Radopholus similis isolates on banana plants (Musa AAA cv. poyo). Nematropica 25(2): 135-141. 1

FAO (Food and Agriculture Organization). 2018. Database of Weed Species in Crops and Countries. http://www.fao.org/agriculture/crops/thematic-sitemap/theme/biodiversity/weeds/db-countries/c/en/ (Último acceso: Diciembre, 2018). 1

Faretra, F., Antonacci, E. & S. Pollastro. 1988. Sexual Behaviour and Mating System of Botryotinia fuckeliana, teleomorph of Botrytis cinerea. Journal of General Microbiology 134:2543-2550. 1

Faretra, F., Antonacci, E. & S. Pollastro. 1988. Sexual Behaviour and Mating System of Botryotinia fuckeriana, Teleomorph of Botrytis cinerea. Journal of General Microbiology 134: 2543-2550. 2

Fargier, C & C. Manceau. 2007. Pathogenicity assays restrict the species Xanthomonas campestris into three pathovars and reveal nine races within X. campestris pv. campestris. Plant Pathology. 56: 805-818. 1

Fariñas, J., Vásquez, M., Cumana, L., Barrios, R., Leonett, L., Rodríguez, G. & D. Mark. 2011. Flórula de plantaciones de palma aceitera establecidas en el estado Monagas, Venezuela. Revista Científica UDO Agrícola 11 (1):71-82. 2

Farr, D. & A. Rossman. 2013. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Febrero, 2013). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2013. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Marzo, 2013). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2014. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ . (Último acceso: Marzo, 2018). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2014. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ . (Último acceso: Septiembre, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2015. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ (Último acceso: Octubre, 2015) 1

Farr, D. & A. Rossman. 2016. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Agosto, 2016). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2016. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Diciembre, 2016). 8

Farr, D. & A. Rossman. 2016. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Noviembre, 2016). 12

Farr, D. & A. Rossman. 2016. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Octubre, 2016). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2016. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Septiembre, 2016). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Septiembre, 2017). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: , 2017). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Abril, 2017). 15

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Agosto, 2017). 12

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Agosto, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Enero, 2017). 43

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Febrero, 2017). 85

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Febrero, 2018). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Julio, 2017). 12

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Julio, 2018). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Junio, 2017). 25

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Junio, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Marzo, 2017). 97

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Mayo, 2017). 35

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Noviembre 2017). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Noviembre, 2017). 21

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Octubre, 2017). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Septiembre 2017). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Septiembre, 2017). 6

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso:Noviembre, 2017). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2017. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ . (Último acceso: Febrero, 2017). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases, U.S. National Fungus Collections, ARS, USDA. (United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service), Systematic Botany and Mycology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ (Último acceso: Abril, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases, U.S. National Fungus Collections, ARS, USDA. (United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service), Systematic Botany and Mycology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ (Último acceso: Febrero, 2018). 33

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases, U.S. National Fungus Collections, ARS, USDA. (United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service), Systematic Botany and Mycology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ (Último acceso: Marzo, 2018). 20

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Abril, 2018). 12

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Junio, 2018). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Marzo, 2018). 10

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Septiembre, 2018). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Abril, 2018). 4

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Diciembre, 2018). 5

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Julio, 2018). 13

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: junio, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Marzo, 2018). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Noviembre, 2018). 4

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Octubre, 2018). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Septiembre, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/ . (Último acceso: Mayo, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Diciembre, 2018). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2018. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Octubre, 2018). 4

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Agosto, 2019). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultura Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Ultimo acceso: Septiembre, 2019). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases. (Último acceso: Septiembre, 2019). 3

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Diciembre, 2019). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Febrero, 2019). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: noviembre, 2019). 1

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso:Marzo, 2019). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2019. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. https://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/index.cfm. (Último acceso: noviembre, 2019). 2

Farr, D. & A. Rossman. 2020. Fungal Databases, US National Fungus Collections, ARS, USDA. 2

Farr, D. & A. Rossman. 2022. Fungal Databases. United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Systematic Mycology and Microbiology Laboratory. http://nt.ars-grin.gov/fungaldatabases/. (Último acceso: Marzo, 2022). 2

Fennimore, S., Smith, R. & M. Mcgiffen. 2001. Weed Management in Fresh Market Spinach (Spinacia oleracea) with S-metolachlor. Weed Technology 15(3):511-516. 3

Ferdous, R. & S. Shamim. 2011. Fungal diseases of cotton plant Gossypium hirsutum l. in Bangladesh. Dhaka University journal of biological sciences 20(2):139-146. 2

Ferdous, R. & Shamsi, S. 2011. Fungal diseases of cotton plant Gossypium hirsutum L. in Bangladesh. Dhaka University Journal of Biological Sciences 20(2): 139-146. 1

Fernández, F., Castro, V. & F. Serna. 2015. Hormigas cortadoras de hojas de Colombia: Acromyrmex & Atta (Hymenoptera: Formicidae). Fauna de Colombia, Monografía nro. 5. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D.C., Colombia. 350pp. 1

Fernández, O. & A. Quesada. 2013. Nematodos asociados a los cultivos de Costa Rica. Laboratorio central de diagnóstico de plagas. Ministerio de agricultura y ganadería servicio fitosanitario del estado. Departamento de laboratorios. Costa Rica. 57 pp. 2

Fernández, O. & A. Quesada. 2013. Nematodos asociados a los cultivos de Costa Rica. Ministerio de Agricultura y Ganadería. Servicio Fitosanitario del Estado. Departamento de Laboratorios. Laboratorio central de diagnóstico de plagas 49pp. 1

Fernández, O. & A. Quesada. 2013. Nematodos asociados a los cultivos de Costa Rica. Ministerio de Agricultura y Ganadería. Servicio Fitosanitario del Estado. Departamento de Laboratorios. Laboratorio central de diagnóstico de plagas. 49pp. 18

Fernández, O. & A. Quesada. 2013. Nematodos asociados a los cultivos de Costa Rica. Ministerio de Agricultura y Ganadería. Servicio Fitosanitario del Estado. Laboratorio Central de Diagnóstico de Plagas. Costa Rica. 49pp. 1

Fernández, O. & A. Quesada. 2013. Nemátodos asociados a los cultivos de Costa Rica. Ministerio de Agricultura y Ganadería. Servicio Fitosanitario del Estado, Departamento de laboratorios, Laboratorio central de diagnóstico de plagas. Costa Rica. 49pp. 18

Fernández, O. & S. López. 1964. Llagas radiculares Negra (Rosellinia bunodes) y Estrellada (Rosellinia pepo) del cafeto. I. Patogenicidad e influencia de la clase de inóculos en la infección. Cenicafé 15(3): 126-144. 2

Fernández, S., Rodríguez, G., Gómez, N., Gregorio, M. & Y. Fernández. 2012. Enfermedades en plantas en el Estado de Michoacán. Biológicas 14(2):75-89. 1

Ferran, M. 2010. Control biológico de araña roja y trips en el cultivo del fresón. PHYTOMA (215): 53-54. 1

Ferrer, F. 2001. Biological control of agricultural insect pests in Venezuela; advances, achievements, and future perspectives. Biocontrol News and Information 22(3):67-74. 3

Ferrucho, R., Cifuentes, J., Ceresini, P. & C. García. 2012. Rhizoctonia solani AG-3PT is the major pathogen associated with potato stem canker and black scurf in Colombia. Agronomía Colombiana 30(2):204-213. 2

Figueroa, A. 1946. Catalogación inicial de las cochinillas del Valle del Cauca. Revista de la Facultad Nacional de Agronomía Medellín 6(23): 196-220. 2

Figueroa, A. 1952 1

Figueroa, A. 1952. Catálogo de los artropodos de las clases Arachnida e Insecta encontrados en el hombre, los animales y las plantas de la república de Colombia – 1. Acta Agronómica 2(3):127-139. 7

Figueroa, A. 1952. Catálogo de los artrópodos de las clases Arachnida e Insecta encontrados en el hombre, los animales y las plantas de la República de Colombia – 1. Acta Agronómica 2(3):127-139. 6

Figueroa, A. 1952. Catálogo de los artrópodos de las clases Arachnida e Insecta encontrados en el hombre, los animales y las plantas de la república de Colombia – 1. Acta Agronómica 2(3):127-139. 35

Figueroa, A. 1977. Insecto y acarinos de Colombia. Facultad de Ciencias Agropecuarias Palmira, Colombia. 20 pp. 1

Figueroa, A. 1977. Insectos y acarinos de Colombia. Universidad Nacional de Palmira. Facultad de ciencias agropecuarias Palmira (eds). Primera edición. Cali, Colombia. 357pp. 1

Figueroa, A. 1977. Insectos y acarinos de Colombia. Universidad Nacional Palmira. Facultad de Ciencias Agropecuarias Palmira (eds). Primera edición. Cali, Colombia. 357pp. 9

Figueroa, A. 1977. Insectos y acarinos de Colombia. Universidad Nacional Palmira. Facultad de ciencias agropecuarias Palmira (eds). Primera edición. Cali, Colombia. 357pp. 1

Figueroa, A. 2022. Aprovechamiento de especies nativas del género Piper para el control de hongos fitopatógenos asociados al cultivo de pitahaya amarilla (Selenicereus megalanthus K. Schum ex Vaupel): Una alternativa para su conservación. Trabajo de grado para optar por el título de Magister en Conservación y Uso de la Biodiversidad Modalidad de: investigación. Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Estudios Ambientales y Rurales. 105 p 3

Figueroa, A. 2022. Aprovechamiento de especies nativas del género Piper para el control de hongos fitopatógenos asociados al cultivo de pitahaya amarilla (Selenicereus megalanthus K. Schum ex Vaupel): Una alternativa para su conservación. Trabajo de grado para optar por el título de Magister en Conservación y Uso de la Biodiversidad Modalidad de: investigación. Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Estudios Ambientales y Rurales.105 p 1

Figueroa, A., Márquez, L., Vallejo, F., Huertas, C. & B. Pineda. 1995. Detección del virus de la mancha necrótica del Impatiens (INSV) en tomate Lycopersicum esculenthum Mil. y producción de híbridos con posible resistencia génetica. Resúmenes XVI Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 52 pp. 1

Figueroa, A., Márquez, L., Vallejo, F., Huertas, C. & B. Pineda. 1995. Detección del virus de la mancha necrótica del Impatiens (INSV) en tomate Lycopersicum esculentum Mill. y producción de híbridos con posible resistencia génetica. En: Memorias XVI Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 52 pp. 5

Figueroa, W., Ramírez, J. & A. Sigarroa. 2013. Efecto de las cepas nativas Paecilomyces sp. (Bainier) y Lecanicillium sp. (Zimm) en el control de Carmenta foraseminis Eichlin (Lepidoptera: Sesiidae) en cultivos de cacao (Theobroma cacao L.). Acta Agronómica 62(3):279-286. 1

Finot, V., Figueroa, M. & V. Peréz. 2000. Distribucion de comunidades de malezas en la provincia de Ñuble, VIII Región, Chile. Agro-Ciencia 16(1):33-46. 2

Fischer, I. & J. Rezende. 2008. Diseases of passion flower (Passiflora spp.). Pest Tecnology 2(1): 1-19. 1

Fischer, I., Perdona, M., Cruz, J. & A. Firmino. 2017. First report of Lasiodiplodia theobromae on Macadamia integrifolia in Brazil. Summa Phytopathologica 43(1): 70-70. 1

Flórez, E. & M. Hernández. 1981. Fluctuación de la población del minador de las hojas del cafeto, Leucoptera coffeella y sus enemigos naturales en el Valle del Cauca. Revista Colombiana de Entomología 7(3-4): 29-38. 1

Flórez, R. & R. Mora. 2010. Manejo fitosanitario integrado. En: Fresa (Fragaria x ananassa Duch) producción y manejo poscosecha. Corredor Tecnológico Agroindustrial, Cámara de Comercio de Bogotá, Universidad Nacional de Colombia. Colombia. 48-51pp. 9

Forbes, G., Morales, J., Restrepo, S., Pérez, W., Gamboa, S., Ruiz, R., Cedeño, L., Fermin, G., Andreu, A., Acuña, I. & R. Oliva. 2013. Phytophthora infestans and Phytophthora andina on Solanaceous hosts in South America. CABI International 48-58. 1

Forero, C. & H. Muñoz. 1986. Nuevas Enfermedades del Lulo Solanum quitoense Lám. en los departamentos de Cundinamarca y Boyacá. En: Resumenes VII Congreso Nacional. Asociación Colombiana de Fitopatología (ASCOLFI). Paipa, Boyacá. 33-34pp. 1

Forero, C. & H. Muñoz. 1986. Nuevas Enferrmedades del Lulo Solanum quitoense Lam. en los departamentos de Cundinamarca y Boyacá. En: Resumenes VII Congreso Nacional. Asociación Colombiana de Fitopatología (ASCOLFI). Paipa, Boyacá. 33-34pp. 2

Forero, D. 2021. Two newly introduced Heteroptera (Insecta: Hemiptera) species in Colombia: Brachyplatys subaenus (Plataspidae) and Thaumastocoris peregrinus (Thaumastocoridae). Papéis Avulsos de Zoologia 61. 1

Forero, L. 2019. Fitopatógenos relacionados con la pudrición basal del fruto de pitahaya (Selenicereus megalanthus) en el municipio de Miraflores (Boyacá, Co). En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 70pp. 2

Forero, M. & H. Muñoz. 1986. Nuevas enfermedades del lulo Solanum quitoense Lam. en los departamentos de Cundinamarca y Boyacá. En: Resúmenes VII Congreso de la Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines. (ASCOLFI). Paipa, Colombia. 33-34 pp. 3

Forero, M., Gutiérrez, T. & E. Caicedo. 1999. Estudios sobre la etiología de la pudrición basal del fruto de la Pitahaya (Selenicereus megalanthus Haw). En: Memorias XX Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Manizales, Colombia. 10pp. 3

Forero, S. & A. Suarez. 2016. Primer registro del género Lithophorus (Coleoptera: Bothrideridae) para Colombia y de L. ornatus para Suramérica. Revista Colombiana de Entomología 42(2): 199-200. 1

Forti, S., Santos de Melo, A., Souza, G. & F. Leite. 2001. Controle de Cerconota anonella (Sepp.) (Lep.: Oecophoridae) e de Bephratelloides pomorum (Fab.) (Hym.: Eurytomidae) em frutos de graviola (Annona muricata L.). Revista Brasileira de Fruticultura 23(3): 722-725. 1

Foss, C. & Jones, L. 2000. Crop Profile for Spinach Seed in Washington. Cooperative extension Washington State Univerity. Washington. USA. 11pp. 2

Fotopoulos, V., Dovas, C. & N. Katis. 2011. Incidence of viruses infecting spinach in greece, highlighting the importance of weeds as reservoir hosts. Journal of Plant Pathology 93(2):389-395. 2

Fraire, M., Yáñez, M. & D. Nieto. 2003. Hongos patógenos en fruto de fresa ( Fragaria x ananassa Duch.) en postcosecha. Revista Mexicana de Fitopatología 21(3): 285-291. 1

Fraire, M., Yáñez, M., Nieto, D. & G. Vázquez. 2003. Hongos patógenos en fruto de fresa ( Fragaria x ananassa Duch.) en postcosecha. Revista Mexicana de Fitopatología 21(3): 285-291. 1

Francis, J. & C. Lowe. 2000. Bioecología de Árboles Nativos y Exóticos de Puerto Rico y las Indias Occidentales. United States Department of Agriculture. International Institute of Tropical Forestry. Río Piedras. Puerto Rico. 582pp. 1

Franco, A. 2005. Diagnóstico, Epidemiologia y Biología del hongo Itersonia perplexans Derx en Crisantemo (Dendranthema grandiflora Tevelev) variedad Mum Rover en el Oriente Antioqueño. Tesis Ingeniera Agrónoma. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Colombia. Medellín, Colombia. 34pp. 1

Franco, A., Cárdenas, R., Montoya, E. & I. Zenner. 2003. Hormigas asociadas con insectos chupadores en la parte aérea del cafeto. Revista Colombiana de Entomología 29(1) 95 - 105. 2

Franco, A., Cárdenas, R., Montoya, E. & I. Zenner. 2003. Hormigas asociadas con insectos chupadores en la parte aérea del cafeto. Revista Colombiana de Entomología 29(1): 95-105. 7

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodriguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Rios, G., Rodriguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramirez. 2002. El cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regionales Nueve y Cuatro. Manizalez, Colombia. 112pp. 4

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodríguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Rios, G., Rodríguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramirez. 2002. El cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regionales Nueve y Cuatro. Manizalez, Colombia. 112pp. 1

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodríguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Rios, G., Rodríguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramírez. 2002. El cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regional Nueve y Cuatro. Manizalez, Colombia. 112pp. 1

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodríguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Rios, G., Rodríguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramírez. 2002. El cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regional Nueve. Manizalez, Colombia. 112pp. 1

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodríguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Rios, G., Rodríguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramírez. 2002. El Cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regionales Nueve y Cuatro. Manizalez, Colombia. 112pp. 1

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodríguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Rios, G., Rodríguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramírez. 2002. El cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regionales Nueve y Cuatro. Manizalez, Colombia. 112pp. 21

Franco, G., Bernal, J., Giraldo, M., Tamayo, P., Castaño, O., Tamayo, A., Gallego, J., Botero, M., Rodríguez, J., Guevara, N., Morales, J., Londoño, M., Ríos, G., Rodríguez, J., Cardona, J., Zuleta, J., Castaño, J. & M. Ramírez. 2002. El cultivo del Lulo. Manual Técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (CORPOICA), Regionales Nueve y Cuatro. Manizalez, Colombia. 112pp. 1

Franco, G., Gallego, G., Botero, M., Romero, M., Pérez, J., Gallego, J., Morales, J. & D. Echeverry. 2004. Identificación y espacialización de la plagas asociadas al cultivo de lulo Solanum quitoense Lam, en el Eje Cafetero. En: Memorias del V Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Quinto Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Tecnología para la Transformación de Frutas. Manizales, Colombia. 19-27pp. 1

Franco, G., Gallego, G., Botero, M., Romero, M., Pérez, J., Gallego, J., Morales, J. & D. Echeverry. 2004. Identificación y espacialización de la plagas asociados al cultivo de lulo Solanum quitoense Lam, en el Eje Cafetero. En: Memorias del V seminario nacional e internacional de frutales. Quinto Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Tecnología para la Transformación de Frutas. Manizales, Colombia. 19-27pp. 2

Franco, G., Gallego, G., Botero, M., Romero, M., Pérez, J., Gallego, J., Morales, J. & D. Echeverry. 2004. Identificación y espacialización de la plagas asociados al cultivo de lulo Solanum quitoense Lam, en el eje cafetero. En: Memorias del V Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Quinto Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Tecnología para la Transformación de Frutas. Manizales, Colombia. 19-27pp. 1

Franco, G., Gallego, G., Botero, M., Romero, M., Pérez, J., Gallego, J., Morales, J. & D. Echeverry. 2004. Identificación y especialización de la plagas asociados al cultivo de lulo Solanum quitoense Lam, en el Eje Cafetero. En: Memorias del V seminario nacional e internacional de frutales. Quinto Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Tecnología para la Transformación de Frutas. Manizales, Colombia. 19-27pp. 1

Franco, G., Gallego, G., Botero, M., Romero, M., Pérez, J., Gallego, J., Morales, J. & D. Echeverry. 2004. Identificación y especialización de la plagas asociados al cultivo de lulo Solanum quitoense Lam, en el eje cafetero. En: Memorias del V Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Quinto Seminario Nacional e Internacional de Frutales. Tecnología para la Transformación de Frutas. Manizales, Colombia. 19-27pp. 1

Freire, I. 2013. Control químico de Botrytis cinerea en el cultivo de mora de Castilla Rubus glaucus. Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Ingeniería Agronómica. Universidad Técnica de Ambato. Ceballos, Ecuador. 54pp. 1

Freitas, L. & V. Scussel. 2002. Toxigenic fungi in beans (Phaseolus vulgaris L.) classes black and color cultivated in the state of Santa Catarina, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology 33: 138-144. 2

French, B. 2006. Diseases of Food Plants in Papua New Guinea, a Compendium. Australia. 302pp. 2

French, B. 2006. Diseases of Food Plants in Papua New Guinea, a compendium. Australia. 302pp. 2

Fribourg, C., Jones, R. & R. Koenig. 1977. Host plant reactions, physical properties and serology of three isolates of Andean potato latent virus from Peru. Annals of Applied Biology 86: 373-380. 1

Friesen, R., Causton, C. & G. Markin. 2008. Status of the biological control of banana poka, Passiflora mollissima (aka P. tarminiana) in Hawaii. XII International Symposium on Biological Control of Weeds. 669-675pp. 1

Frost, P. 2005. Weed mangement in lettuce. Horticultural Australia Ltd. Sydney. Australia. 84 pp. 5

Frost, P.. 2005. Weed management in carrots. Final report. Horticultural Australia Ltda.. 50 pp. 1

Frutos, V., Pérez, M. & D. Risco. 2016. Efecto de diferentes mulches orgánicos sobre el cultivo de brócoli (Brassica oleracea L. var. Italica) en Ecuador. IDESIA 34(6): 61-66. 1

Fuentes, C. & J. Ferrucho. 2002. Actividad del Azimsulfuron + Metsulfuron-metil en Cyperus rotundus L. bajo condiciones controladas. Agronomía Colombiana 19(1-2):37-42. 1

Fuentes, C., Osorio, A., Granados, J. & W. Piedrahita. 2006. Flora arvense asociada con el cultivo de arroz en el departamento del Tolima-Colombia. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de Agronomia. Bayer CropScience. Bogotá. 256pp. 1

Fung, S.Y., Kuiper, I., van Dijke-Hermans, C.M. & E. van der Meijden.2002. Growth damage and silvery damage in chrysanthemum caused by Frankliniella occidentalis is related to leaf food quality. En: Marullo,R. & L. Mound (eds).Thrips and Tospoviruses:Proceedings of the 7th International Symposium on Thysanoptera.Australian National Insect Collection, Canberra.Australia.191-196pp 1

Gabriel, J., Luna, N., Vargas, A., Magne, J., Angulo, A., La Torre, J. & A. Bonifacio. 2012. Quinua de valle (Chenopodium quinoa Willd.): fuente valiosa de resistencia genética al mildiu (Peronospora farinosa Willd.). Journal of the Selva Andina Research Society 3(2):27-44. 3

Gagné, R., Posada, F. & Z. Gil. 2004. A new species of Bruggmannzella (Diptera: Cecidomyiidae) aborting young fruit of avocado, Persea americana (Lauraceae), in Colombia and Costa Rica. Proceedings Entomological Society of Washington 106 (3): 547-553. 1

Gaitán, A., Cristancho, M., Castro, B., Rivillas, C. & G. Cadena. 2015. Part II. Pests. En: Compendium of coffe diseases and pests. The American Phytopathological Society. 3340 Pilot Knob Road. Saint Paul, Minnesota. USA. 45pp. 5

Gaitán, E. & F. González. 1994. Aspectos biológicos y de manejo de Melanoloma sp. en piña (Ananas comosus), en el Municipio de Corconá (Antioquia). Tesis Ingeniero Agrónomo. Universidad Nacional de Colombia, sede Medellin. Colombia. 84 pp. 1

Gaitán, M. & C. Mazenett. 1982. Reconocimiento identificación y comportamiento de insectos plaga en el cultivo del repollo (Brassica oleracea L var. capitata) en el área del departamento de Cundinamarca. Tesis Ingeniero Agrónomo. Facultad de Agronomia. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá D.C. Colombia. 206 pp. 1

Galindo, C. & G. Arbeláez. 1995. Control de la pudrición basal del tallo en Gypsophlla paniculata L. causada por Pythium sp., con tres aislamientos de Trichoderma harzianum y con fungicidas. Agronomía Colombiana. 12(2):134-141. 1

Galindo, J., Barreto, N. & D. Ospina. 2001. Una metodología muestral sugerida para la estimación de la población de la chinche de los pastos en la sabana de Bogotá. Agronomía Colombiana 18(1-2):7-13. 1

Gallego, C., Mejía, P., Mejía, R., Salazar, H. & H. Toro. s.a. Reconocimiento de nemátodos fitoparásitos en crucíferas en el Municipio de Villamaría (Caldas). Resúmenes de Investigación 5: 41-45. 4

Gallego, F. & R. Vélez. 1992. Lista de insectos que afectan los principales cultivos, plantas forestales, animales domésticos y al hombre en Colombia. Universidad Nacional de Colombia y Sociedad Colombiana de Entomología (SOCOLEN). Medellín, Colombia. 198pp. 8

Gallo, F. 1996. Manual de fisiología, patología post-cosecha y control de calidad de frutas y hortalizas. Convenio Servicio Nacional de Aprendizaje (SENA) y Reino Unido. Armenia, Quindío. Colombia. 43-52pp. 2

Gallo, Y., Sierra, A., Morales, M., Gutiérrez, P. & M. Marín. 2019. Diagnóstico molecular de diez virus de ARN en cultivos de papa en el Oriente de Antioquia (Co). En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 214pp. 5

Gallozzi, R. & O. Duarte. 2007. Cultivos de diversificación para pequeños productores de frijol y maíz en America Central. Naranjilla (Lulo) y Cocona. Guía practica de manejo agronómico, cosecha, poscosecha y procesamiento de naranjilla. Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA). Managua, Nicaragua. 49pp. 1

Gally, M., López, S., Dokmetzian, D., Ramos, A. & D. Barreto. 2003. Cinética de crecimiento in vitro de cepas Argentinas de Phytophthora sojae. INTA, Argentina. RIA 32(1): 39 – 47. 1

Gally, T., González, B. & F. Pantuso. 2006. Efecto conjunto de Fusarium sp. y Phomopsis sp., patógenos transmitidos por las semillas en plántulas de soja [Glycine max (L.) Merrill]. Revista Mexicana de Fitopatología 24(2):156 -158. 1

Galvis, C. 2002. El mal rosado del cafeto. Avances técnicos nro. 299. Federación Nacional de Cafeteros (FNC)-Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFE). Chinchiná, Caldas, Colombia. 8pp. 1

Gamarra, H., Juarez, H., Giraldo, D., Barker, I., Fuentes, S., Muller, G. & F. Morales. 2009. Potato yellow vein virus: a model for emerging potato diseases and climate change. En: Conference poster in tropical roots and tubers in a changing climate: a convenient opportunity for the world. Fifteenth Triennial Symposium of the International Society for Tropical Root Crops. Lima, Peru. 131-137pp. 3

Ganaha-Kikumura, T. Ohno, S. Kuma, K. Masumoto, M. & N. Maekado. 2012. Species composition of thrips (Thysanoptera: Thripidae) and spider mites (Acari: Tetranychidae) on cultivated chrysanthemum (Asteraceae) in Okinawa, southwestern Japan.Entomological Science 15: 232–237 1

Gandarilla, H., Rivillas, O. & E. Fernández. 2014. Fitonemátodos asociados a los cultivos de frutos tropicales. Fitosanidad 18(3):187-197. 2

Gandarillas, A., Saravia, R., Plata, G., Quispe, R. & R. Ortiz. 2014. Principales plagas y enfermedades de la quinua. Capítulo 2.6 En: Bazile, D. et al. Estado del arte de la quinua en el mundo en 2013” FAO (Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura), Santiago de Chile y CIRAD (Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement), Montpellier, Francia. 227-256 pp 1

Garcés, E., Orozco, M. & G. Arbeláez. 1997. Diferenciación de razas de Fusarium oxysporum f. sp. dianthi por electroforesis de aril esterasa. Agronomía Colombiana 14(1):66-71. 1

Garcés, F. & G. Vargas. 2017. Informe de inspección Fitosanitaria Municipio de Galeras, Sucre. Programa de Variedades. Centro de investigación de la Caña de Azúcar de Colombia (CENICAÑA). Santiago de Cali, Valle del Cauca. Colombia. 10pp. 2

García, D. 2017. Etiología y patogénesis de manchas foliares en Eucalipto (Eucalyptus globulus Labill.) en la provincia de Cajamarca. Tesis de Ingeniero Forestal. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Cajamarca, Cajamarca. Perú. 84 pp. 1

García, F. 2010. Control biológico de araña roja y trips en el cultivo del fresón. PHYTOMA (215): 53-54. 1

García, F. 2013. Caracterización morfométrica y genética de Diaphorina citri (Hemiptera: Liviidae) de Rutaceas en Cazones, Veracruz, México. Tesis presentada como requisito parcial para obtener el Grado de Doctora en Ciencias. Posgrados Fitosanidad. Institución de Enseñanza e Investigación en Ciencias Agrícolas. Campus Montecillo. México. 98 pp. 1

García, F., Obando, J. & C. Betancourt. 2004. Reconocimiento de especies de Meloidogyne en tomate de árbol (Solanum betacea) y lulo (Solanum quitoense) en la zona norte del departamento de Nariño. Revista de Ciencias Agrícolas 21(1-2): 1-12. 8

García, L. 2015. Evaluación del antagonismo de cepas de Trichoderma spp. frente a cepas de Fusarium spp. y Colletotrichum spp. aisladas de cultivos orgánicos de sábila (Aloe vera) y árandano (Vaccinium corymbosum). Revista Teckne13(1):56-66. 1

García, L. 2015. Evaluación del antagonismo de cepas de Trichoderma spp. frente a cepas de Fusarium spp. y Colletotrichumspp. aisladas de cultivos orgánicos de sábila (Aloe vera) y árandano (Vaccinium corymbosum). Revista Teckne13(1):56-66. 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info/catalogue/Crypticerya%20multicicatrices/ (Último acceso: 2018). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info/catalogue/Ferrisia%20virgata/ (Último acceso: 2018). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info/catalogue/Planococcus%20citri/ (Último acceso: 2019). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics.http://scalenet.info/catalogue/Ceroplastes%20cirripediformis/. (Último acceso: 2018). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics.http://scalenet.info/catalogue/Crypticerya%20multicicatrices/ (Último acceso: 2018). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics.http://scalenet.info/catalogue/Crypticerya%20multicicatrices/. (Último acceso: 2018). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Ben. Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet. A literature-based model of scale insect biology and systematics.http://scalenet.info/catalogue/Philephedra%20tuberculosa/. (Último acceso: 2018). 2

García, M., Denno, B., Miller, D., Miller, G., Ben-Dov, Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet: A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info. (Último acceso: marzo, 2021). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Miller, G., Ben-Dov, Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet: A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info. Último acceso: agosto, 2020). 6

García, M., Denno, B., Miller, D., Miller, G., Ben-Dov, Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet: A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info. Último acceso: julio, 2020). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Miller, G., Ben-Dov, Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet: A literature-based model of scale insect biology and systematics. Database. http://scalenet.info. (Último acceso: abril, 2018). 6

García, M., Denno, B., Miller, D., Miller, G., Ben-Dov, Y. & N. Hardy. 2016. ScaleNet: A literature-based model of scale insect biology and systematics. Database. http://scalenet.info. (Último acceso: junio, 2018). 1

García, M., Denno, B., Miller, D., Miller, G., Ben-Dov, Y., & N. Hardy. 2018. ScaleNet: A literature-based model of scale insect biology and systematics. http://scalenet.info. (Último acceso: Octubre, 2018). 1

García, P. & A. Cotes. 2001. Búsqueda de alternativas de control biológico de Rhizopus stolonifer en la Post-Cosecha de tomate. Fitopatología Colombiana 25(1): 39-47 1

García, P., Duran, Y., Lázaro, M., Vargas, H. & J. Acuña. 2016. Manejo de trips (Frankliniella spp.) en mango (Mangifera indica L.) a base de azufre en Veracruz, México. Entomología mexicana 3:441−444. 2

García, S. & B. Pineda. 2000. Reconocimiento de enfermedades fungosas transmitidas por semilla en germosplasma de Brachiaria spp. Fitopatología Colombiana 24(2): 39-46. 2

García, S., Pineda, B. & S. Salazar. 2001. Presencia de la enfermedad del Mal de azúcar (Sphacelia spp.) en tres especies de pasto Brachiaria (Panicoidea, Poaceae). Fitopatología Colombiana 25(2): 55-62. 1

García, S., Vargas, E., Escobar, J., Betancourt, M., Castrillón, M., Marulanda, A. & G. Martínez. 1999. Identificación de los virus latente y moteado de la papa andina en los departamentos de Caldas y Tolima. Fitopatología Colombiana 23(1): 32-34. 2

Gardan, L., Dagua, C., Prior, P., Gillis, M. & G. Saddler. 2000. Acidovorax anthurii sp. nov., a new phytopathogenic bacterium which causes bacterial leaf-spot of anthurium. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 50:235-246. 1

Gardner, D. 1989. Pathogenicity of Fusarium oxysporum f. sp. Passiflorae to banana poka and other Passiflora spp. In Hawaii. Plant Disease 73(6): 476-478. 1

Gargantiel, F. & R. Davide. 1973. Survey and pathogenicity tests of plant parasitic nematodes associated with sugarcane in Negros Occidental. Philippine Phytopathology 9 (1/2): 59-66. 2

Garita, L., Tassi, A., Calegario, R., Feitas_Astua, J., Saralonia, R., Romäo, G & E, Kitajima. 2014. Experimental host range of Citrus leprosis virus C (CiLV-C). Tropical plant pathology. 39 (1) 1

Garita, L., Tassi, A., Calegario, R., Feitas_Astua, J., Saralonia, R., Romäo, G & E, Kitajima. 2014. Experimental host range of Citrus leprosis virus C (CiLV-C). Tropical plant pathology. 39(1). 2

Garzón, F. 2000. Principales enfermedades y plagas en el cultivo de Caucho Hevea brasilensis (wild. Ex. Adr. De juss) muel. Arg., con énfasis en la Amazonia Colombiana. Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas (SINCHI)-Ministerio de Medio Ambiente-Plan nacional de desarrollo alternativo (PLANTE). Bogotá D.C. Colombia. 62pp. 1

Gaviria, B. 2004. Identificación de especies de Meloidogyne asociadas con los cultivos de tomate de árbol, lulo y granadilla en Colombia. Revista Universidad Católica de Oriente 18: 53-66. 3

Gámez, A., Hernández, M., Díaz, R. & J. Vargas. 2011. Caracterización de la flora arvense asociada a un cultivo de maíz bajo riego para producción de jojotos. Agronomía Tropical 61(2):133-139. 3

Geldenhuis, M. 2005. Studies on fungi associated with dying Schizolobium parahybum in Ecuador. Tesis Magister Scientiae. Faculty of Natural and Agricultural Sciences. Department of Microbiology and Plant Pathology, University of Pretoria. Pretoria, South Africa. 98pp. 1

Geraud, F., Chirinos, D. & G. Romay. 2001. Efecto físico de las exfoliaciones de la corteza del guayabo (Psidium guajava) sobre Capulinia sp. cercana a jaboticabae von Ihering (Hemiptera: Eriococcidae). Entomotropica 16 (1): 21-27. 6

Ghangaokar, N. & A. Kshirsagar. 2013. Study of seed borne fungi of different legumes. Trends in life sciences 2(1):32-35. 1

Giblin, R., Inserra, R., Stanley, J. & G. Hodges. 2010. The Red Ring Nematode, Bursaphelenchus cocophilus (Cobb, 1919) Baujard, 1989 (Nematoda: Tylenchida). Florida Department of Agriculture and Consumer Services. Pest Alert No. 01748. 6pp. 3

Gibson, R., Jones, M. & N. Fish. 1988. Resistance to potato leaf roll virus and potato virus Y in somatic hybrids between dihaploid Solanum tuberosum and S. brevidens. Theoretical and Applied Genetics 76(1): 113-117. 3

Gibson, R., Jones, M. & N. Fish. 1988. Resistance to potato leaf roll virus and potato virus Y in somatic hybrids between dihaploid Solanum tuberosum and S. brevidens. Theoretical and Applied Genetics 76:113-117. 6

Gijon, A., Teliz, D., Mejia, D., De La Torre, D., Cardenas, E., De Leon, C. & A. Mora. 2011. Leaf Stripe and Stem Rot Caused by Burkholderia gladioli, a New Maize Disease in Mexico. Journal of Phytopatholy 159:377–381 1

Gil, A. & S. López. 2017. Principales plagas y controladores biológicos de Gossypium hirsutum L." algodón nativo" de fibra verde en relación a su ciclo fenológico. Arnaldoa 24(1):359-368. 1

Gil, L. & J. Leguizamón. 2003. Muerte Descendente. Phoma spp. En: Gil, L., Castro, B. & G. Cadena. El estudio de las enfermedades del cafeto en Colombia. Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (FNC). Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Especial Impresiones. Medellín, Colombia. 115-120pp. 1

Gil, L. 2001. Descripción de daños ocasionados por Colletotrichum sp. en flores y frutos de café en Colombia. Federación Nacional de Cafeteros (FNC)-Centro Nacional de Investigaciones de Café (CENICAFÉ). Avances Técnicos nro. 288. Chinchiná, Caldas, Colombia. 4pp. 1

Gil, R., Carrillo, D. & J. Jimenez. 2007. Determinación de las principales plagas de la espinaca (Spinacia oleracea) en Cota, Colombia. Revista Colombiana de Entomología 33(2): 124-128 1

Gil, R., Smith, A., Chaves, B., Wyckhuys, K., Forero, C. & J. Jiménez. 2009. Combined efficacy assessment of soil solarization and bio-fungicides for management of Sclerotinia spp. in lettuce (Lactuca sativa L.). Agronomía Colombiana 27(2):193-201. 1

Gil, Z., Bustillo, A., Gómez, D. & P. Marín. 2004. Corthylus n. sp. (Coleóptera: Curculionidae), plaga del aliso en la cuenca de río Blanco en Colombia. Revista Colombiana de Entomología 30(2) 171 - 178 1

Gil, Z., Bustillo, A., Gómez, D. & P. Marín. 2004. Corthylus n. sp. (Coleóptera: Curculionidae), plaga del aliso en la cuenca de río Blanco en Colombia. Revista Colombiana de Entomología 30(2) 171 - 178. 2

Gil, Z., Bustillo, A., Gómez, D. & P. Marín. 2004. Corthylus n. sp. (Coleóptera: Curculionidae), plaga del aliso en la cuenca de río Blanco en Colombia. Revista Colombiana de Entomología 30(2): 171 - 178. 1

Gilardi, G., Gullino, M., & A. Garibaldi. 2007. Attacks of Alternaria sp. on Hydrangea macrophylla cv in northern Italy. Italy , Informatore Fitopatologico 57 (3) 29-30 pp. 1

Gilligan, T. & S. Passoa. 2014. LepIntercep-An identification resource for intercepted lepidoptera larvae. USDA- Colorado State University. http://idtools.org/id/leps/lepintercept/pdfs/nitidalis.pdf. (Último acceso: Octubre, 2019) 1

Giménez, M., Laguna, I., Ávila, A., De Remes, M., Virla, E., Borgogno, C., Nome, C. & S. Paradell. 2002. Difusión del Corn Stunt Spiroplasma del maíz (Spiroplasma kunkelii) y del vector (Dalbulus maidis) en la República Argentina. Revista de la Facultad de Agronomia, La Plata 105(1): 1-8. 1

Giolitti, F., Herrera, M., Madariaga, M. & S. Lenardon. 2005. Detection of Maize Dwarf Mosaic Virus (MDMV) on maize in Chile. Maydica 50 (2005): 101-104. 1

Giraldo, R. & J. Murillo. 2001. Otras enfermedades transmitidas con el tubérculo semilla de la Papa (Solanum tuberosum L.). En: Alarcón, J. y J. Galindo. Plagas y enfermedades de la Papa. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). Produmedios. Bogotá D.C. Colombia. 87pp. 1

Godoy, S., García, E. & A. Palomo. 1998. Efecto de la precocidad en la reducción del daño por el gusano rosado y secadera tardía en algodonero Gossypium hirsutum L. Agricultura técnica en México 24(1):19-26. 1

Golian, J. & Z. Anyszka. 2015. Effectiveness of different methods of weed management in Chinese cabbage (Brassica rapa L.) and transplanted leek (Allium porrum L.). Journal of Research and Applications in Agricultural Engineering 60(3):89-94. 1

Gonçalves, C. I., Vilas-Boas, L., Branco, M., Rezende, G. D. & C. Valente. 2019. Host susceptibility to Gonipterus platensis (Coleoptera: Curculionidae) of Eucalyptus species. Annals of Forest Science, 76(3), 1-11. 1

Gonçalves, C., Vilas-Boas, L., Branco, M., Rezende, G. & C. Valente. 2019. Host susceptibility to Gonipterus platensis (Coleoptera: Curculionidae) of Eucalyptus species. Annals of Forest Science 76(63) 1-11. 1

Gonçalves, C., Vilas-Boas, L., Branco, M., Rezende, G. & C. Valente. 2019. Host susceptibility to Gonipterus platensis (Coleoptera: Curculionidae) of Eucalyptus species. Annals of Forest Science 76(63): 1-11. 1

Gonçalves, C.I., Vilas-Boas, L., Branco, M., Rezende, D., & C. Valente. 2019. Host susceptibility to Gonipterus platensis (Coleoptera: Curculionidae) of Eucalyptus species. Annals of Forest Science 76, 63: 11p 1

Gonsalves, D., Tripathi, S., Carr, J. & J. Suzuki. 2010. Papaya Ringspot virus. The Plant Health Instructor. http://www.apsnet.org/edcenter/intropp/lessons/viruses/Pages/PapayaRingspotvirus.aspx. (Último acceso: Diciembre, 2015) 1

Gonzalez, M. 2004. Caracterización del complejo de patógenos causales del tizón de la acícula del pino en la finca Saquichaj, Cobán, Alta Verapaz. Tesis Ingeniería Agronómica. Facultad de Agronomía/Instituto de Investigaciones Agronómicas. Universidad de San Carlos de Guatemala. Guatemala. 48 pp. 2

González, C. & M. Suris. 2011. Incidencia de las poblaciones de trips sobre tres especies de solanáceas en diferentes sistemas de cultivos. Revista de Protección Vegetal 26(2):92-99. 1

González, E., Lozano, J., España, P., Tafoya, F., Padilla, S., Perales, M. & A. Juárez. 2008. Estrategias de manejo orgánico - Biológico del picudo de la guayaba (Conotrachelus spp). Instituto Nacional de Investigación Forestales, Agricolas y Pecuarias (INIFAP). Folleto técnico nro. 39. 35pp. 1

González, G. & C. García. 1998. Caracterización de las poblaciones de Phytophthora infestans en el altiplano cundiboyacense con base en el tipo de apareamiento y sensibilidad al fungicida metalaxyl. Fitopatología colombiana 22(2): 74-81. 1

González, I. & C. Berrio. 2019. Identificación de fitopatógenos asociados a la muerte de árboles de Macadamia integrifolia en la finca “Las Margaritas” del municipio de Calarcá, Quindío. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 66pp. 3

González, J., García, E. & M. Perdomo. 1983. Important rice weeds in Latin America. In Proceedings of the Conference on Weed Control in Rice. Los Baños, Philippines 119-132 pp. 1

González, L. 2014. Sinopsis de Membracidae (Hemiptera: Membracoidea) de Colombia, relacionados con ecosistemas agrícolas. Magister en Ciencias Agrarias, Entomología. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia, Sede Bogotá. Colombia. 145pp. 1

González, M. 2008. Aspectos de sistemática y biología del complejo Rhizoctonia. Fitosanidad 12(3): 147-159. 1

Gómez, B., Yela, O.& C. Salazar. 2019. Caracterización de hongos asociados a la secadera de la granadilla Passiflora ligularis Juss. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 59pp. 2

Gómez, D. & C. Ospina 2003. Diagnóstico de enfermedades en plantaciones de Nogal Cordia alliodora y Chaquiro Retrophyllum rospigliosii en la zona cafetera colombiana. En: Memorias XXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Armenia-Quindío, Colombia. 31pp. 4

Gómez, E., Álvarez, E. & G. Llano. 2004. Identificación y caracterización de cepas de Ralstonia solanacearum Raza 2 agente causal del moko del plátano en Colombia. Fitopatología Colombiana 28(2): 71-75. 2

Gómez, E., Álvarez, E. & G. Llano. 2006. Variabilidad genética de Ralstonia solanacearum Raza 2, agente causante del moko de plátano en Colombia. Fitopatologia Colombiana 30(1): 1-7. 2

Gómez, J. 1980. Determinación de la infestación de fitonematodos en plantaciones bananeras de Urabá, Colombia. Fitopatología Colombiana 9(1): 19-32. 2

Gómez, L. & E. Aguilar. 2016. Guía de cultivo de la quinua. Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura (FAO). Universidad Nacional Agraria La Molina. Lima. 123 pp. 1

Gómez, P. 1999. Problemas fitosanitarios de los cultivos de maracuyá, papaya y piña en el trópico húmedo del litoral Ecuatoriano. Tesis Ingeniera agrónoma. Facultad de Ciencias Agrícolas. Universidad Técnica de Barahoyo, Babahoyo. Ecuador. 68pp. 1

Gómez, S., Ramírez, J., Melgarejo, L., Mendoza, L., Neira, J., Parada, H., Gómez, S. Ramírez, L. & C. Cabrera. 2019. Virulencia y respuesta espectral de aislamientos de Colletotrichum sp. inoculados en mango de azúcare (Mangifera indica). En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 62pp. 1

Gómez, S., Saavedra, C., Angel, J. & O. Guerrero. 2002. Detección de Spongospora subterranea f. sp. Subterranea en suelos y semillas de uso potencial para la multiplicación del cultivo de Papa mediante el uso de secuencias especificas de DNA. En: Memorias XXIII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 67pp. 1

Gónzalez, R., Buitrago, L. & M. Silva. 1992. Evaluación e identificación de enfermedades fungosas en genotipos de sorgo (Sorghum bicolor L. Moench) en localidades del Meta. Fitopatología Colombiana 16(1): 106-112. 5

Graeme, L. 2004. Chapter 4. Pests of Sugarcane. In: Glyn, J. Sugarcane. 2nd Edition. Blackwell Science Ltd a Publishing Company. UK. 78-100pp. 3

Grajales, O., Varon de Agudelo, F., Huertas, D., Marmolejo, F. & D. Saavedra. 2000. Estudios etiologicos de pudriciones vasculares en el cultivo de lulo (Solanum quitoense Lam.) en el Valle del Cauca. En: Memorias XXI Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Medellín, Colombia. 17-18pp. 2

Granada, G. & J. Victoria. 1978. Nota fitopatológica. Estudio preliminar de razas fisiológicas de X. malvacearum en Colombia. Fitopatología Colombiana 7(1): 29-31. 1

Granara de Willink, M. 2009. Dysmicoccus de la Región Neotropical (Hemiptera: Pseudococcidae). Revista de la Sociedad Entomológica Argentina 68(1-2): 11-95. 8

Granara de Willink, M. 2009. Dysmicoccus de la Región Neotropical (Hemiptera: Pseudococcidae). Revista de la Sociedad Entomológica Argentina 68(1-2): 11-95. 2

Granara, M. & L. Claps. 2003. Systematics, Morphology and Physiology Cochinillas (Hemiptera: Coccoidea) Presentes en plantas ornamentales de la Argentina. Neotropical Entomology 32(4):625-637 3

Granara, M. & P. González. 2018. Revisión taxonómica de Pseudococcus Westwood (Hemiptera: Pseudococcidae) de Centro y Sud América con descripciones de especies nuevas. Insecta Mundi 0673: 1–117. 1

Granara, M. 2009. Dysmicoccus de la Región Neotropical (Hemiptera: Pseudococcidae). Entomología Argentina 68(1-2):11-95. 1

Granara, M. 2009. Dysmicoccus de la Región Neotropical (Hemiptera: Pseudococcidae). Revista de la Sociedad Entomológica Argentina. 68 (1-2): 11 – 95. 1

Graves, S. & A. Shapiro. 2003. Exotics as host plants of the California butterfly fauna. Biological Conservation 110:413–433. 1

Grisales, N., Orozco, L., Rodríguez, P. & M. Betancourt. 2019. Efecto de recubrimientos comestibles sobre la vida útil e incidencia de fitopatógenos poscosecha en frutos de mora. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 68pp. 4

Grisales, N., Rodríguez, P., Correa, G. & P. Tamayo. 2019. Inventario de los principales fitopatógenos de poscosecha y defectos de calidad de los frutos de aguacate (Persea americana Mill cv. Hass). Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (AGROSAVIA). Colección Transformación del Agro 6 - 9pp. 1

Grisales, V. 2019. Estudio taxonómico del género Heilipus Germar (Curculionidae: Molytinae: Hylobiini) para Colombia. Tesis presentada como requisito para obtener el grado de Maestría en Ciencias. Estado de México. 124 pp. 1

Groenewald, J., Nakashima, C., Nishikawa, J., Shin, H., Park, J., Jama, A., Groenewald, M., Braun, U. & P. Crous. 2013. Species concepts in Cercospora: spotting the weeds among the roses. Studies in Mycology 75:115-170. 1

Gromann, M. 2015. Levantamento fitossociológico de plantas daninhas e seletividade de herbicidas em sorgo e milheto. Tesis de grado en Mestre Desenvolvimento Rural. Vice-Reitoria de Pós-Graduação, Pesquisa e Extensão. Universidade de Cruz Alta, Cruz Alta. Brasil. 57pp. 2

Gualdrón, C., Suárez, A. & H. Valencia. 1997. Hongos del suelo aislados de zonas de vegetación natural del páramo de Chisacá, Colombia. Caldasia 19(1-2): 235-245. 1

Guamán, M. 2018. Caracterización morfológica, molecular y de resistencia a fungicidas de Colletotrichum sp., aislado de tomate de árbol (Solanum betaceum). Tesis Ingeniera Agrónoma. Facultad Ciencias Agrícolas. Universidad Central del Ecuador, Quito. Ecuador. 106 pp. 1

Guerrero, M., Castaño, J. & H. González. 2001. Aspectos sobre la epidemiología y manejo de la cenicilla del Manzano Podosphaera leucotricha (Ell. & Ev.) E. S. Salmon. En: Memorias XXII Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Palmira, Colombia. 31-32pp. 1

Guerrón, C. & A. Mora. 2019. Detección de Alternaria alternata y Fusarium spp. En el cultivo de uva (Vitis spp.) en el Ecuador. Tesis: Ingeniería en Biotecnología. Facultad de Ingeniería y Ciencias Aplicadas. Universidad de las Américas (UDLA). Ecuador. 105p. 1

Guevara, L., Nieto, L. & F. Varón de Agudelo. 1995. Nematodos asociados a palma de aceite, Elaeis guineeensis Jacq., afectadas con pudrición de cogollo. Fitopatología Colombiana 19(2): 36-42. 4

Guevara, Y., López, N. & A.Tapiero. 2019. Identificación del agente causal de la roya de la soya en los Llanos Orientales de Colombia. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 186pp. 1

Guiancotti, P., Moro, M., Nepomuceno, M., Barroso, A., Martins, P. & P. Alves. 2017. Weed community interference and phytosociological studies in a sweet sorghum crop. Planta Daninha (35):1-10. 2

Gupta, V., Shamas, N., Razdan, V., Sharma, B., Sharma, R., Kaur, K., Singh, I., John, D. & A. Kumar. 2013. Foliar application of fungicides for the management of brown spot disease in rice (Oryza sativa L.) caused by Bipolaris oryzae. African Journal of Agricultural Researche 8(25): 3303-3309. 1

Guru, G., Ravichandra, N., Narasimhamurthy, T., Punith, C. & P. Yadahalli. 2014. Management of Meloidogyne incognita infecting carrot by using bioagents. Journal of Biopesticides 7(2):144-150. 1

Gutiérrez, I., Pérez, G., Benega, R. & L. Gómez. 2002. Coberturas vivas de leguminosas en el plátano (Musa sp.) FHIA 03. Cultivos Tropicales 23(3): 11-17. 1

Gutiérrez, O., Nieto, D., Gutiérrez, J., Delgadillo, F. & J. Domínguez. 2002. Características morfológicas, culturales y patogenicidad de aislamientos de Colletotrichum spp. obtenidos de frutos de guayaba (Psidium guajava L.). Revista Mexicana de Fitopatología 20(1):24-30. 4

Gutiérrez, R., Castro, B. & C. Rivillas. 2006. Manejo de la Llaga negra del cafeto. Cenicafé 57(4): 299-311. 1

Gutiérrez, S., Reis, E. & A. Carmona. 2007. First record of Monographella albescens on rice in Corrientes Province, Argentina. Australasian Plant Disease Notes 2:19-20. 1

Guzmán, M., Ángel, J., Victoria, J. & A. Álvarez. 1997. Diagnóstico de la escaldadura de la hoja Xanthomonas albilineans (Ashby) Dowson en Caña de Azúcar. Fitopatología Colombiana 21(1): 10-17. 1

Guzmán, M., Román, V., Franco, L. & P. Rodríguez. 2010. Presencia de cuatro virus en algunas accesiones de la Colección Central Colombiana de papa mantenida en campo. Agronomía Colombiana 28(2):225-233. 8

Guzmán, P., Gilbertson, R., Nodari, R., Johnson, W., Temple, S., Mandala, D., Mkandawire, A. & P. Gepts. 1995. Characterization of variability in the fungus Phaeoisariopsis griseola suggests coevolution with the common bean (Phaseolus vulgaris). Phytopathology 85(5):600-607. 1

Guzmán, T., Durán, J., Montero, W., Vargas, H., Castro, Z., Carvajal, D. & D. León. 2014. Diagnóstico y dinámica poblacional de nematodos fitoparásitos en dos sistemas de cultivos de piña en Costa Rica. Tecnología en Marcha 27(2): 58-81. 1

Güisa, D., Perdomo, T. & P. Moreno. 2020. Solicitud de modificación del estatus fitosanitario para Fusarium oxysporum. 6pp. 1

Hafez, S., Sundararaj, P., Handoo, Z., Skantar, A., Carta., L. & D. J. Chitwood. 2007. First Report of the Pale Cyst Nematode, Globodera pallida, in the United States. Plant Disease 91(3):325 2

Hajiabadi, A., Asaei, F., Abdollahi, B. & M. Rastgou. 2012. Natural incidence of tomato viruses in the North of Iran. Phytopathologia Mediterranea 51(2):390-396. 1

Hamada, N., Silva, A., Couturier, G. & B. Ronchi. 1998. Insetos associados à gravioleira (Annona muricata L., Annonaceae) na região de Manaus, Amazonas, Brasil. Acta Amazonica 28(4): 425-431. 1

Harris, A. 2018. The Tingidae (Hemiptera: Heteroptera) of southern central america (with an emphasis on Costa Rica). A Thesis Submitted to the Graduate Faculty of the North Dakota State University of Agriculture and Applied Science. North Dakota State University. Fargo. North Dakota. 312pp. 1

Hazelrigg, A. & G. Maia. 2016. Plant diagnostic clinic. The University of Vermont - (UVM). 22pp. 1

Heinz, R., Thompson, R., Marín, J., Lara, J., Flores, M. & J. Alcalá. 2013. Malezas hospederas de Frankliniella occidentalis y reservorios del virus del bronceado del tomate en el Altiplano mexicano. Fitosanidad 17(1):5- 9. 1

Helman, S., Beltrán, R., Garay, F. & E. Raña. 2011. Efecto de las Poblaciones de Alabama argillacea (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae) en Cultivos de Algodón a Dos Distanciamientos. Neotropical Entomology 40(2):251-257. 1

Henao, J., Chaves, F. & G. Arbelaez. 1985. Estudio del poder patogénico de Botrytis cinerea Pers sobre cinco especies de flores de exportación. Fitopatología Colombiana 11(2): 5-9. 4

Hennen, J., Figueiredo, M., Carvalho, A. & P. Hennen. 2005. Catalogue of the species of plant rust fungi (Uredinales) of Brazil. Instituto de Pesquisas, Jardim Botânico do Rio de Janeiro: Rio de Janeiro, Brazil.. 490pp. 1

Hennen, J., Figueiredo, M., de Carvalho, A. & P. Hennen. 2005. Catalogue of the species of plant rust fungi (Uredinales) of Brazil. Unknown journal or publisher. 490pp. 39

Henz, G. 2002. Doenças da mandioquinha-salsa e sua situação atual no Brasil. Horticultura Brasileira 20(2):135-144. 1

Henz, G., Lopes, C. & F. Santos. 1994. Post-harvest diseases of arracacha (Arracacia xanthorrhiza bancroft) in Brazil. Proceedings of the Tenth Symposium of the International Society for Tropical Root Crops. Salvador, Bahia, Brazil. 6pp. 2

Hernández, A., Muiño, B., Rosón, C., Casola, C., Porras, A. & A. López. 2010. Control químico de patógenos fungosos en piña de vivero (I). Fitosanidad 14(1):31-37. 1

Hernández, A., Torres, D., Monroy, D., Beltrán, C. & S. Kobayashi. 2019. Presencia de los virus Mirafiori lettuce big vein virus Y Lettuce big vein-associated virus en el cultivo de lechuga en Colombia. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 120pp. 2

Hernández, C., Muñoz, C. & G. Cobo. 2019. Evaluación de la patogenicidad de aislamientos de Colletotrichum spp., de frutos de aguacate cv. hass en el Valle del Cauca (Co). En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 28pp. 1

Hernández, D. & Y. Solano. 2016. Insectos de granos almacenados asociados a mazorcas de maíz (Zea mays) en campo antes o durante la cosecha en Las Velas, Estado Yaracuy, Venezuela. Boletín del Centro de Investigaciones Biológicas 50(3): 246-258. 1

Hernández, E., Vera, J., Ramirez, G., Pérez, S., Lopez, J., Bautista, N. & V. Pinto.2009. Pronóstico de la Fluctuación poblacional del minador de la hoja de crisantemo Liriomyza huidobrensis Blanchard (Diptera: Agromyzidae) mediante modelos de series de tiempo. Acta Zoológica Mexicana (n.s) 25(1): 21-32. 2

Hernández, G. 2013. Prevalencia de Toxoptera citricida y tasa de adquisición del Citrus tristeza virus en la Península de Yucatán. Tesis Magister en Ciencias. Fitopatología. Institución de Enseñanza e Investigación en Ciencias Agrícolas. Montecillo, México. 95pp. 2

Hernández, H., Bautista, N., Vera, J., Suárez, A. & S. Ramírez. 2007. Fluctuación poblacional y parasitismo de larvas de Copitarsia Decolora Guenée, Plutella xylostella L. y Trichoplusia ni Hübner (Lepidoptera) en brassica Oleracea L. Acta Zoológica Mexicana 23(2): 183-196. 1

Hernández, L., Nápoles, L., Pérez, L., Concepción, O., Cid, M., Alvares, Y. & V. Zamora. 2017. Infección de Pineapple mealybug wilt-associated virus 1, 2 y 3 en plantas de piña, híbrido ‘MD-2’ en Ciego de Ávila. Revista Centro Agrícola 44(2):52-60. 35

Herrera, J. & A. Barbara. 2013. Identificación de Thrips palmi Karny (Thysanoptera: Thripidae) en cultivos de cucurbitáceas en Panamá. Agronomía Mesoamericana 24(1):47-55. 1

Herreros, L. 1979. Enfermedades fungicas del clavel. Hojas divulgativas nro. 17-18/79 HD. Ministerio de agricultura. Madrid, España. 20 pp. 1

Hidalgo, M., Rodríguez, R., Ricardo, N. & H. Ferrás. 1999. Dinámica poblacional de cicadélidos (Homoptera: Cicadellidae) en un agroecosistema cañero de Cuba. Revista de Biología Tropical 47(3): 1 -11. 1

Higuera, N. 2011. Relación del agroecosistema quinua con los medios de vida y seguridad alimentaria de pequeños productores de la zona andina colombiana. Tesis sometida a consideración de la Escuela de Posgrado como requisito para optar por el grado de Magister Scientiae en Agricultura Ecológica. Centro AgronómicoTropical de Investigación y Enseñanza (CATIE).Turrialba, Costa Rica. 208 pp. 1

Higuera, O., Beltrán, J., Cuellar, J., Riaño, S., Chaparro, N., Castiblanco, D., Farias, T., Amado, G. & Y. Mosquera. 2019. Evaluación del estado de la mancha café de la vaina (MCV) del arroz en Colombia. En: Memorias XXXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Bogotá, Colombia. 82pp. 2

Hilje, L., Costa, H. & P. Stansly. 2001. Cultural practices for managing Bemisia tabaci and associated viral diseases. Crop Protection 20:801–812. 2

Hill, C. 1982. New plant disease records in New Zealand, 1974-1982. New Zealand Journal of Botany 20: 355-359. 1

Hincapié, L., Afanador, L., Calderón, H. & S. Jaramillo. 2003. Caracterización de la variabilidad molecular de Spongospora subterranea (Well) Lagerh. f.sp. subterranea en las principales zonas papera de Colombia. En: Memorias XXIV Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Armenia-Quindío, Colombia. 22pp. 1

Hinostroza, F., Mendoza, M., Navarrete, M. & X. Muñoz. 2014. Cultivo de yuca en el Ecuador. Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), Estación experimental portoviejo. Boletín Divulgativo nro. 436. 1-28pp. 1

Hipólito, A., Osorio, D. & G. Vargas. 2019. MIP-O-38. Muestreo de Telchin licus (Lepidoptera: Castniidae) en caña de azúcar en la altillanura colombiana. En: Resúmenes XLVl Congreso Sociedad Colombiana de Entomología (SOCOLEN). Medellín, Colombia. 662 pp. 1

Hocking, D. 1968. Stem canker and pink stain of teak in Tanzania associated with Fusarium solani. Plant Disease Reporter 52(8): 628-629. 1

Hoddle, M., Nakahara, S. & P. Phillips. 2002. Foreign exploration for Scirtothrips perseae Nakahara (Thysanoptera: Thripidae) and associated natural enemies on avocado (Persea americana Miller). Biological Control 24(3):251–265. 3

Hodges, G., Edwards, G. & W. Dixon. 2005. Chilli thrips Scirtothrips dorsalis Hood (Thysanoptera: Thripidae) A new pest thrips for Florida. Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Division of Plant Industry. 3pp. 1

Hodkinson, I. 1999. Biocontrol of eucalyptus psyllid Ctenarytaina eucalypti by the Australian parasitoid Psyllaephagus pilosus: a review of current programmes and their success. Biocontrol News and Information 20(4): 129N-134N. 1

Hogg, D. & E. Nordheim. 1983. Age-specific survivorship analysis of Heliothis spp. populations on cotton. Researches on Population Ecology 25: 280–297. 1

Holguin, C., Rojas, D., Pérez, O. & S., Marchant. 2023. First Detection of the Potato Cyst Nematode, Globodera rostochiensis, Infecting Potato in the Central Region of Colombia. Plant Disease 107(9): 2889. 1

Holm, L., Doll, J., Holm, E., Pancho, J. & J. Herberger. 1996. World weeds: Natural histories and distribution. En: Asclepias curassavica L.. Asclepiadaceae, Milkweed Family. Jhon wiley & Sons, Inc. New York. USA. 80-85 pp. 1

Hossain, M., Tze, O., Nadarajah, K., Jena, K., Rahman, M. & W. Ratnam. 2014. Identification and validation of sheath blight resistance in rice (Oryza sativa L.) cultivars against Rhizoctonia solani. Canadian Journal of Plant Pathology 36(4): 482-490. 1

Houshyar, M., Rouhani, H., Falahat, M., Mahdikhani, E., Malekzadeh, S. & C. Probst. 2014. Studies on Aspergillus flavus Link. isolated from maize in Iran. Journal of Plant Protection Research 54(3):218-224. 1

Hoyos, L. & J. Moya. 2010. Nematodos asociados con cultivos de arroz en Huila y Tolima. Agronomía Colombiana 28(3):577-579. 2

Hoyos, V., Martínez, M. & G. Plaza. 2015. Malezas asociadas a los cultivos de cítricos, guayaba, maracuyá y piña en el departamento del Meta, Colombia. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas 9(2):247-258. 12

Huamán-Pilco, A., Arce-Inga, M., Huamán-Pilco, J., Aguilar-Rafael, V., Oliva-Cruz, S., Hernández-Diaz, E., Fernandez-Rodriguez, F. Torres-Cruz, T. & J., Díaz-Valderrama. 2024. First report of basal rot of yellow dragon fruit (Selenicereus megalanthus) caused by Fusarium oxysporum in Peru. Plant Disease, (ja). 6p 1

Huerta, G., Holguín, F., Benítez, F. & J. Toledo. 2009. Epidemiología de la Antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. and Sacc)] en Mango (Mangifera indica L.) cv. Ataulfo en el Soconusco, Chiapas, México. Revista mexicana de fitopatología 27(2): 93-105. 1

Huertas, C., Sarria, G. & B. Pineda. 2002. Evidencias del mildeo velloso (Peronsclerospora sorghi (W. Weston & Uppal) C.G. Shaw) en cultivos de maíz y sorgo en Colombia. Fitopatología Colombiana 26(2): 55-60. 3

Huertas, C., Varón de Agudelo, F. & D. Saavedra. 1999. Epidemia de tizón tardio (Phytophrthora infestans) en el cultivo de lulo (Solanum quitoense Lam) en el Valle del Cauca. En: Memorias XX Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología y Ciencias Afines (ASCOLFI). Manizales, Colombia. 52pp. 1

Huertas, R., Lomeli, J., Trujillo, J. & A. Hernández. 2003. Combate de Liriomyza spp. en crisantemo mediante el uso de una aspiradora. Manejo Integrado de Plagas y Agroecología (Costa Rica) 68: 41-45. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 1996. Manejo de algunos problemas fitosanitarios en Arveja, Fríjol, Granadilla, Repollo, Coliflor y Brócoli. Boletín Sanidad Vegetal nro. 14. Promumedios. Bogotá D.C. Colombia. 55pp. 3

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2011. Reporte de Resultados para Cordia alliodora (Ruiz & Pav.) Oken. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000100-12. Muestra nro. 114074 . Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Cedrela spp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000348-12. Muestra nro. 125825 . Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Cedrela odorata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000101-12. Muestra nro. 123364. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Cordia alliodora (Ruiz & Pav.) Oken. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario. Muestra nro. 552. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Cupressus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000227-12. Muestra nro. 124300 . Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Eucalyptus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000084-13. Muestra nro. 120755. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 4pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Eucalyptus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000348-12. Muestra nro. 125828. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Gmelina arborea Roxb. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0149. Muestra nro. 697. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Musa spp. Grupos Simmonds: AA, AAA, AAB, ABB. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0116. Muestra nro. 664. Dirección Técnica de Epidemiologia y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000227-12. Muestra nro. 124301 . Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000348-12. Muestra nro. 125829. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000348-12. Muestras nro. 125827, 125829 y 125830. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario. Muestra nro. 355. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Tectona grandis L.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000348-12. Muestra nro. 125826 . Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Tectona grandis L.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario. Muestra nro. CDF0383. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2012. Reporte de Resultados para Tectona grandis L.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario. Muestra nro. CDF0408. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000676-13. Muestra nro. 136154, 136155, 136156, 136157, 136158, 136159, 136161, 136163. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Citrus aurantiifolia (Christm.) Swingle. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000676-13. Muestra nro. 136160. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Citrus latifolia (Yu. Tanaka) Tanaka. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0226. Muestra nro. 198. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Citrus latifolia (Yu. Tanaka) Tanaka. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0227. Muestra nro. 199. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Hibiscus rosa-sinensis L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario CDF1705. Muestra nro. 151013-1705. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Hibiscus rosa-sinensis L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario CDF0332. Muestra nro. 160413-332. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Inga sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000846-13. Muestra nro. 136969. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Mangifera indica L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000676-13. Muestra nro. 136162. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000637-13. Muestra nro. 135234, 135235, 135236, 135237, 135238. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000689-13. Muestra nro. 135285. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000740-13. Muestra nro. 136715, 136716, 136717, 136718, 136720, 136721, 136724. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000814-13. Muestra nro. 138894, 138895, 138896, 138897. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000852-13. Muestra nro.138093 a la 138102. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-0047. Muestra nro. 113. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Acacia mangium Willd. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000933-13. Muestra nro. 130933. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Alnus jorullensis Kunth. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0093. Muestra nro. 091. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1142. Muestra nro. 13-1098. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1143. Muestra nro. 13-1102. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1144. Muestra nro. 13-1109. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1145. Muestra nro. 13-1110. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1148. Muestra nro. 13-1108. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1149. Muestra nro. 13-1111. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1150. Muestra nro. 13-1104. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1153. Muestra nro. 13-1099. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1154. Muestra nro. 13-1101. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Aloe vera (L.) Burm.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario PL-13-1173. Muestra nro. 13-1112. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Caesalpinia spinosa (Molina) Kuntze. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000396-13. Muestras nro. 132971 - 132973. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 4pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Citrus sinensis (L.) Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0558. Muestra nro. 526. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Hevea brasiliensis (Willd. ex A. Juss.) Müll. Arg. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000712-13. Muestras nro. 134945 y 134946. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Hibiscus spp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0022, 0023, 0024, 0025, 0026 . Muestras nro. 0022, 0024, 0025 y 0026. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0372. Muestra nro. 346. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 2

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Pinus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0249. Muestra nro. 220. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000396-13. Muestras nro. 132971 - 132973. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 4pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Tectona grandis L.f. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0022, 0023, 0024, 0025, 0026. Muestra nro. 0023. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2013. Reporte de Resultados para Zea mays L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 000302-13. Muestra nro. 130754 y 130758. Dirección Técnica de Análisis y Diagnóstico Agrícola. 4pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-0143. Muestra nro. 286. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-0144. Muestra nro. 287. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-429. Muestra nro. LDF NOR 14-919. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 495. Muestra nro. LDFCO130514-0495. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 852. Muestra nro. LDFCO060614-0852. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0048-14. Muestra nro. 1400820, 1400821, 1400822, 1400823, 1400824, 1400825, 1400826, 1400827, 1400828, 1400829, 1400830, 1400831, 1400832, 1400834, 1400835. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0896. Muestra nro. LDFVA-2014-3085. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0897. Muestra nro. LDFVA-2014-3086. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0899. Muestra nro. LDFVA-2014-3088. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0902. Muestra nro. LDFVA-2014-3091. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-319. Muestra nro. LDFTO-2014-4065. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-0025. Muestra nro. 90 Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-0042. Muestra nro. 108 Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 858. Muestra nro. LDFCO060614-0858. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 859. Muestra nro. LDFCO060614-0859 Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Psidium guajava L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 860. Muestra nro. LDFCO060614-0860 Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0023. Muestra nro.LDFAN-2014-0004. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-0045. Muestra nro. 117. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-430. Muestra nro. LDFNOR 14-920. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-432. Muestra nro. LDFNOR 14-922. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona squamosa Vell. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 1511. Muestra nro. DFCO021014-151. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona squamosa Vell. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 851. Muestra nro. LDFCO060614-0851. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona squamosa Vell. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario CDF0298. Muestra nro. LDFCO010414-0298. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Annona muricata L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-431. Muestra nro. LDFNOR 14- 921. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus aurantiifolia (Christm.) Swingle. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0027. Muestra nro. LDFAN-2014-0028. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 6pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus aurantiifolia (Christm.) Swingle. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0027. Muestra nro. LDFAN2014-0030. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 6pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus aurantiifolia (Christm.) Swingle. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0008. Muestra nro. LDFAN-2014-0046, LDFAN-2014-0047, LDFAN-2014-0048, LDFAN-2014-0050, LDFAN-2014-0051, LDFAN-2014-0052, LDFAN-2014-0053, LDFAN-2014-0054, LDFAN-2014-0055, LDFAN-2014-0056. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus limon (L.) Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0027. Muestra nro. LDFAN-2014-0027, LDFAN-2014-0031. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 6pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus limon (L.) Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0027. Muestra nro. LDFAN-2014-0027. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 6pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus sinensis (L.) Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 496. Muestra nro. LDFCO130514-0496. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus sinensis (L.) Osbeck. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario. 1512. Muestra nro. DFCO021014-151. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Citrus paradisi Macfad. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0008. Muestra nro. LDFAN-2014-0049. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus rosa-sinensis L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 00186-15. Muestra nro. 1500926, 1500927. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus rosa-sinensis L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 14-433. Muestra nro. LDFNOR 14-923. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus rosa-sinensis L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 853. Muestra nro. LDFCO060614-0853. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus rosa-sinensis L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario CDF0300. Muestra nro. LDFCO010414-0300. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 1402. Muestra nro. LDFCO050914-1402. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 1403. Muestra nro. LDFCO050914-1403. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Hibiscus sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 1510. Muestra nro. DFCO021014-1501. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Inga sp. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 00861-15. Muestra nro. 1507086. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 5pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Mangifera indica L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 497. Muestra nro. LDFCO130514-0497. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Mangifera indica L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 855. Muestra nro. LDFCO060614-0855. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Musa spp. Grupos Simmonds: AA, AAA, AAB, ABB. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 00861-15. Muestra nro. 1507087. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 5pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0255-14. Muestra nro. LNDF1403997, LNDF1403998, LNDF1404004, LNDF1404005. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0350-14. Muestra nro. LNDF1405194. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0369-14. Muestra nro. LNDF-1404026. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0604. Muestra nro. LDFVA-2014-2460. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0605. Muestra nro. LDFVA-2014-2461. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0606. Muestra nro. LDFVA-2014-2462. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0611. Muestra nro. LDFAN-2014-2432. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0612. Muestra nro. LDFAN-2014-2433. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0613. Muestra nro. LDFAN-2014-2435. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0614. Muestra nro. LDFAN-2014-2436. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0615. Muestra nro. LDFAN-2014-2437. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0656. Muestra nro. LDFAN-2014-2440. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0657. Muestra nro. LDFAN-2014-2441. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0658. Muestra nro. LDFAN-2014-2442. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0659. Muestra nro. LDFAN-2014-2443. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0660. Muestra nro. LDFAN-2014-2444. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0661. Muestra nro. LDFVA-2014-2451. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0663. Muestra nro. LDFVA-2014-2453. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0666. Muestra nro. LDFVA-2014-2456. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0669. Muestra nro. LDFVA-2014-2459. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0680-14. Muestra nro. LNDF-1407865, LNDF-1407866, LNDF-1407868, LNDF-1407870, LNDF-1407871, LNDF-1407872. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0728. Muestra nro. LDFVA-2014-2605. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0734. Muestra nro. LDFVA-2014-2472. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0738. Muestra nro. LDFVA-2014-2468. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0739. Muestra nro. LDFVA-2014-2467. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0740. Muestra nro. LDFVA-2014-2466. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-367. Muestra nro. LDFTO-2014-3702. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-390. Muestra nro. LDFTO-2014-3998. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-391. Muestra nro. LDFTO-2014-4000. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-395. Muestra nro. LDFTO-2014-4004. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-424. Muestra nro. LDFTO-2014-4010. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-425. Muestra nro. LDFTO-2014-4011. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-427. Muestra nro. LDFTO-2014-4013. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-433. Muestra nro. LDFTO-2014-4019. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-448. Muestra nro. LDFTO-2014-4057. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-452. Muestra nro. LDFTO-2014-4061. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-454. Muestra nro. LDFTO-2014-4063. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-456. Muestra nro. LDFTO-2014-4065. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-457. Muestra nro. LDFTO-2014-4066. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-460. Muestra nro. LDFVA-2014-2608. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-463. Muestra nro. LDFVA-2014-3081. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-464. Muestra nro. LDFVA-2014-3082. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-467. Muestra nro. LDFVA-2014-3085. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-468. Muestra nro. LDFVA-2014-3086. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-470. Muestra nro. LDFVA-2014-3088. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-472. Muestra nro. LDFVA-2014-3090. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oriza sativa. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 2014-474. Muestra nro. LDFVA-2014-3092. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0232-14. Muestra nro. 1402926, 1402928, 1402930, 1402931, 1402932, 1402933, 1402934, 1402935, 1402938. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0255-14. Muestra nro. 143998. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0306-14. Muestra nro. 1404012, 1404013, 1404017. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0350-14. Muestra nro. 1405192, 1405193, 1405194, 1405195, 1405196, 1405197, 1405198, 1405199, 1405200. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0351-14. Muestra nro. 1405007, 1405008, 1405009, 1405010, 1405011. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0369-14. Muestra nro.1404025, 1404026, 1404027, 1404029, 1404031, 1404032,1404034. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0416-14. Muestra nro. 1405393. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0452-14. Muestra nro.1405394, 1405395, 1405396, 1405397, 1405398, 1405399, 1405400, 1405401, 1405404, 1405405, 1405406. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0459-14. Muestra nro. 1406417. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0465-14. Muestra nro. 1405431, 1405432, 1405433, 1405434, 1405435, 1405436, 1405437, 1405438, 1405439, 1405440, 1405441, 1405442, 1405443. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0495-14. Muestra nro. 1406993, 1406995, 1406996, 1406998, 1407002,. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0547-14. Muestra nro. 1407530, 1407532, 1407533, 1407535, 1407537 . Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0548-14. Muestra nro. 1407863, 1407869, 1407870, 1407871, 1407872. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0607-14. Muestra nro. 1408362, 1408363, 1408364, 1408365, 1408366, 1408368, 1408369, 1408370. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 3pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0677-14. Muestra nro. 1408996, 1408997, 1408999. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0678-14. Muestra nro. 1409002, 1409004, 1409005. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0694. Muestra nro. LDFVA-2014-0726. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 2pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0786. Muestra nro. LDFVA-2014-2454. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0790. Muestra nro. LDFVA-2014-2459. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0799. Muestra nro. LDFVA-2014-2452. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0802. Muestra nro. LDFVA-2014-2461. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0807. Muestra nro. LDFVA-2014-2464. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0809. Muestra nro. LDFVA-2014-2466. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0813. Muestra nro. LDFVA-2014-2462. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0815. Muestra nro. LDFVA-2014-2469. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0817. Muestra nro. LDFVA-2014-2471. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0818. Muestra nro. LDFVA-2014-2472. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0830. Muestra nro. LDFVA-2014-2600. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0832. Muestra nro. LDFVA-2014-2602. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0833. Muestra nro. LDFVA-2014-2603. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0837. Muestra nro. LDFVA-2014-2604. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0838. Muestra nro. LDFVA-2014-2605. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0839. Muestra nro. LDFVA-2014-2606. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0841. Muestra nro. LDFVA-2014-2608. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

ICA (Instituto Colombiano Agropecuario). 2014. Reporte de Resultado para Oryza sativa L. Análisis y Diagnóstico Fitosanitario 0894. Muestra nro. LDFVA-2014-3083. Dirección Técnica de Epidemiología y Vigilancia Fitosanitaria. 1pp. 1

Bibliografía